常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法
常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法:细胞培养中常见的生物污染类型有7种,分别是细菌污染,支原体污染,原虫污染,黑胶虫污染,真菌污染,病毒污染以及非细胞污染,真菌污染来源,一般是来自实验服,并且具有气候性,多雨······
发布时间:2025-08-08 09:38:11 细胞资源库平台 访问量:77
4T1-OVA细胞系是在高度转移性小鼠乳腺癌模型4T1基础上,通过基因工程稳定表达卵清蛋白(OVA)的衍生细胞株。该模型结合了4T1细胞模拟人类三阴性乳腺癌恶性进展的特性(包括自发转移至肺、肝、骨等器官)与OVA作为模式肿瘤抗原的优势。OVA作为广泛认可的模型抗原,可通过MHC-I限制性表位(SIINFEKL)被特异性T细胞识别,为研究T细胞介导的抗肿瘤免疫应答(如免疫检查点抑制剂、疫苗或过继性细胞疗法的疗效)提供标准化平台;其保留4T1细胞的高侵袭性和转移能力,适用于乳腺癌转移机制及靶向干预研究;OVA抗原的引入使研究者能通过TCR转基因小鼠(如OT-I CD8⁺ T细胞)精准追踪肿瘤内抗原特异性免疫细胞动态,解析免疫逃逸机制;OVA系统为不同研究组提供了可重复的抗原特异性检测体系,促进疗法横向比较。因此,4T1-OVA成瘤模型是衔接基础免疫机制与转化医学的重要工具,对乳腺癌免疫治疗研发具有不可替代的价值。
细胞名称:4T1-OVA小鼠乳腺癌细胞(FLUC标记)
种属来源:小鼠
组织来源:乳房
生长特性:贴壁
生长细胞形态:上皮细胞样
背景介绍:4T1-OVA细胞系是在高度转移性BALB/c小鼠乳腺癌模型4T1的基础上,通过基因工程改造稳定表达卵清蛋白(ovalbumin, OVA)的衍生细胞株。4T1细胞本身模拟人类三阴性乳腺癌的恶性特征,具有自发转移至肺、肝、骨等远端器官的能力。引入OVA作为模式肿瘤抗原后,该细胞保留了4T1的侵袭性和转移特性,同时兼具OVA抗原的免疫可识别性——其免疫显性表位SIINFEKL(H-2Kb限制性)可被特异性T细胞精准识别。这一设计使4T1-OVA成为肿瘤免疫学研究中整合原位肿瘤进展、转移生物学与抗原特异性免疫应答的理想实验工具,为解析肿瘤微环境动态及免疫治疗机制提供了独特优势。其亲本株4T1细胞是从410.4瘤株中未经诱变筛得的6-硫鸟嘌噙抗性细胞株。当4T1细胞注射到BALB/c小鼠中时,4T1细胞会自发产生高转移肿瘤,可转移到肺、肝、淋巴结和大脑,同时在注射部位形成始发灶,诱导转移时不需要摘除始发灶。4T1细胞在BALB/c小鼠中的生长与转移特性与人体中的乳腺癌十分相近,这种肿瘤是人Ⅵ期乳腺癌的动物模型。4T1细胞诱导的肿瘤在手术后及未手术情况下转移的动力学相近,可以用作手术后及未手术模型。4T1细胞诱导的肿瘤模型跟其他肿瘤模型相比,由于4T1细胞的抗6-硫鸟嘌噙特性,微小的转移细胞团(少到仅仅1个)也可以在许多远端器官中检测到,没必要数淋巴结或称重器官。
puro药筛浓度:4T1-OVA细胞puro药筛浓度为1.0ug/ml,培养过程中建议使用0.5ug/ml puro维持
培养须知:首次复苏或长期未用嘌呤霉素时,建议用含嘌呤霉素的培养基培养24-48小时以清除非抗性细胞。建议定期备份低代次细胞以确保实验一致性。如有特殊需求(如无血清培养),需逐步驯化并验证基因稳定性。
接种方式 | 接种量(细胞数) | 成瘤时间(天) | 转移倾向 | 适用研究方向 | 优缺点 |
乳腺脂肪垫原位接种 | 1×10⁴-1×10⁵ | 5-7天可触诊肿瘤 | 高(肺、肝、骨转移;21天>80%) | 转移机制、肿瘤微环境、免疫治疗研究 | 优点:模拟原位微环境,转移真实性强 ; 缺点:需手术操作,技术要求高 |
皮下接种 | 1×10⁵-5×10⁶ | 7-10天形成可见瘤块 | 低(局部生长为主,罕见远处转移 ) | 药物疗效评估、原位肿瘤生长动力学研究 | 优点:操作简单,便于监测体积; 缺点:转移率低,微环境差异大 |
尾静脉注射 | 2×10⁵-5×10⁵ | 不形成原发瘤 | 快速肺转移(7-14天肺转移灶形成) | 血行转移机制、抗转移药物筛选 | 优点:直接研究转移过程 ; 缺点:无法观察原发瘤进展 |
胫骨原位接种 | 1×10⁴ | 10-14天骨破坏明显 | 局部骨转移(伴破骨细胞活化) | 乳腺癌骨转移模型、骨靶向治疗研究 | 优点:模拟骨转移特异性病理; 缺点:需影像学监测,成本高 |
腹腔注射 | 5×10⁵-1×10⁶ | 不形成实体瘤 | 腹腔播散(肝、腹膜转移为主) | 肿瘤腹水模型、全身性药物分布研究 | 优点:适合研究播散性转移; 缺点:无法定量评估原发灶 |
注意事项
小鼠品系:4T1-OVA需接种于免疫健全的BALB/c小鼠(同源模型)。
伦理规范:肿瘤体积需符合动物福利上限(通常≤2000 mm³)。
产品货号 | 细胞系 | 接种量(细胞数) | 成瘤时间(天) | 成瘤率 | 转移倾向 | 激素受体表达 | 适用研究方向 |
IM-M017 | 4T1 | 1×10⁴-1×10⁶ | 5月7日 | >95% | 高(肺、肝、骨) | ER-/PR-/HER2- | 转移机制、免疫治疗、耐药性研究 |
IM-M059 | EMT6 | 5×10⁵ | 10月14日 | 80-90% | 低(局部侵袭 ) | ER-/PR-/HER2- | 放射治疗、化疗敏感性评估 |
IM-M099 | E0771 | 2×10⁵ | 7月10日 | 80-95% | 中等(淋巴结转移) | ER+/PR+ | 激素依赖性肿瘤、内分泌治疗研究 |
IM-M123 | 67NR | 1×10⁵ | 7月10日 | >90% | 无 | ER-/PR- | 原位肿瘤生长、血管生成研究 |
IMO-002 | 4T1-OVA | 1×10⁴-1×10⁶ | 5月7日 | >90% | 高(肺转移为主) | ER-/PR-/HER2- | 活体成像、药物动力学动态监测 |
影响因素类别 | 具体因素 | 对成瘤的影响 | 优化策略 |
细胞状态 | 细胞活力(活率<85%) | 成瘤延迟/失败,转移率降低 | 复苏后传代≤3次,冻存前活率>95%,使用高浓度血清培养基(如20%FBS)短期恢复 |
OVA表达稳定性 | 抗原丢失导致免疫逃逸研究失效 | 定期流式检测OVA表达(抗-OVA抗体),加嘌呤霉素(1-2μg/mL)维持筛选压力 | |
支原体污染 | 炎症干扰微环境,成瘤率下降 | 每月检测,使用支原体清除剂处理5天 | |
操作参数 | 接种细胞量 | 过低(<1×10⁵):不成瘤; 过高:坏死 | 优化区间: 皮下:2-3×105/100μL 乳腺垫:1×105/50μL(原位) |
基质胶比例 | 未使用基质胶:肿瘤生长慢/转移减少 | 添加50%Matrigel(增强锚定,模拟微环境) | |
注射体积 | 体积过大:细胞渗漏;过小:局部坏死 | 皮下≤100μL,原位≤50μL,缓慢推注(>30秒) | |
宿主状态 | 小鼠品系(非BALB/c) | 免疫排斥导致成瘤失败 | 必须使用BALB/c雌鼠(6-8周龄),同源背景保证免疫兼容性 |
免疫缺陷程度 | 重度缺陷鼠(如NSG)缺乏免疫微环境 | 选择免疫健全BALB/c,或轻度缺陷鼠(如Nude)平衡成瘤性与微环境完整性 | |
激素水平(雌激素) | 4T1生长受雌激素调控 | 同步小鼠动情周期(阴道涂片筛选),或补充17β-雌二醇(0.1mg/kg) | |
环境控制 | 麻醉剂类型 | 异氟烷过量抑制早期肿瘤生长 | 改用酮胺/赛拉嗪混合麻醉(剂量:80mg/kg+10mg/kg),缩短苏醒时间 |
成瘤监测频率 | 频繁测量致机械损伤,影响生长 | 每周测量≤2次,使用数字化卡尺(误差<0.1mm),固定操作人减小偏差 | |
模型验证 | 转移灶确认不足 | 低估自发转移能力 | 成瘤后4周解剖,肺/肝组织做H&E染色或OVA+流式检测 |
抗原特异性T细胞应答未验证 | 无法关联生长与免疫清除效率 | 同步输注CFSE标记的OT-I CD8+T细胞,流式监测肿瘤浸润T细胞扩增 |
常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法:细胞培养中常见的生物污染类型有7种,分别是细菌污染,支原体污染,原虫污染,黑胶虫污染,真菌污染,病毒污染以及非细胞污染,真菌污染来源,一般是来自实验服,并且具有气候性,多雨······
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