常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法
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发布时间:2025-09-19 17:11:25 细胞资源库平台 访问量:54
原代人真皮成纤维细胞(HDFs)是研究皮肤衰老的重要工具,但传统酶解法存在成本高、细胞活力低、操作复杂等问题。在此背景下,来自印度尼西亚帕德贾贾兰大学的 团队在《BMC Research Notes》(2025, 18:311)发表研究,建立了一种高效、低成本的机械分离法,从包皮组织中获取 HDFs。该方法无需酶解,操作简单,可在资源有限的实验室开展,分离的 HDFs 能稳定传代至第 8 代(P8),并保留成纤维细胞表型,为复制性衰老研究提供了可靠模型。
本研究旨在开发一种无需酶解的机械分离 protocol,从包皮组织中分离原代 HDFs。核心步骤包括:包皮样本消毒后,机械分离真皮层并剪碎为 1-2 mm 组织块,贴壁培养;通过传代(P3 至 P8)诱导复制性衰老;采用免疫荧光检测 ACTIN、VIMENTIN 蛋白,RT-qPCR 检测 SERPINH1 基因表达进行细胞鉴定。结果显示,机械分离的 HDFs 呈梭形,表达成纤维细胞特异性标志物,可传代至 P8 并出现衰老表型,证实该方法适用于皮肤内在衰老研究。
HDFs 是真皮的主要细胞,参与胶原合成和组织修复,其复制性衰老模型是研究皮肤自然衰老的经典工具。传统酶解法(如胶原酶、胰蛋白酶)依赖昂贵试剂,且酶的不当使用会导致细胞活力下降,尤其在资源有限地区难以推广。
包皮作为包皮环切术后的生物废弃物,来源丰富(全球男性环切率高),伦理争议小,是获取 HDFs 的理想样本。机械分离法无需酶解,可降低成本并简化操作,但此前缺乏标准化 protocol。本研究优化了机械分离流程,验证了其获取的 HDFs 在复制性衰老研究中的适用性,填补了低成本、易操作的原代 HDFs 分离方法的空白。

图 1:HDFs 机械分离与传代流程示意图
该图展示实验步骤:包皮样本经碘伏、70% 酒精消毒后,去除尿道端(含菌风险高),机械分离真皮层(去除脂肪和表皮),剪碎为 1-2 mm 组织块;组织块接种于 T-25 flask,15 分钟贴壁后加培养基培养;细胞融合至 80-90% 时,用 0.05% 胰蛋白酶传代,重复至 P8。

图 2:HDFs 的形态与鉴定结果
该图展示 HDFs 的生长与表型变化:图 2a 显示组织块培养第 7、10、13 天的细胞生长,第 10 天首次观察到梭形 HDFs 从组织块边缘迁出;图 2b 对比 P3 和 P8 的形态,P3 细胞呈细长梭形,两端尖细,中央直径较大,P8 细胞出现形态异常(扁平、不规则),群体异质性增加;图 2c 的免疫荧光显示,ACTIN(红色)主要分布在细胞边缘,VIMENTIN(绿色)集中在核周并向边缘延伸,两者均与 DAPI(核染色)共定位;定量分析显示 P8 的 VIMENTIN 强度显著高于 P3(p=0.027),ACTIN 无显著变化;图 2d 的 RT-qPCR 显示 SERPINH1 在 P8 的表达较 P3 呈上升趋势(1.80 倍);图 2e 显示细胞面积和核面积在 P3 与 P8 间无显著差异,但核面积均值略有增加。
本研究建立的包皮 HDFs 机械分离 protocol 具有以下优势:无需酶解,降低成本且简化操作,适用于资源有限环境;分离的 HDFs 呈典型梭形,表达 ACTIN、VIMENTIN 和 SERPINH1 等成纤维细胞标志物;可稳定传代至 P8,P8 细胞出现 VIMENTIN 显著升高、形态异常等衰老表型,适合复制性衰老研究。局限性包括成人包皮因脂肪多难以分离、传代中存在污染风险等。该方法为皮肤内在衰老研究提供了经济、可靠的体外模型。
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