常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法
常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法:细胞培养中常见的生物污染类型有7种,分别是细菌污染,支原体污染,原虫污染,黑胶虫污染,真菌污染,病毒污染以及非细胞污染,真菌污染来源,一般是来自实验服,并且具有气候性,多雨······
发布时间:2025-03-17 09:00:00 细胞资源库平台 访问量:41
英文标题:Vascular mimicry induced by m6A mediated IGFL2-AS1/AR axis contributes to pazopanib resistance in clear cell renal cell carcinoma.
中文标题:m6A介导的IGFL2-AS1/AR轴诱导的血管拟态参与了肾透明细胞癌对帕唑帕尼的耐药
发表期刊:《Cell Death Discovery》
影响因子:7
作者单位:西南医科大学
作者信息:Bo Cheng,Mingyue Xie,Yong Zhou,Tian Li,Wanting Liu,Wenjing Yu,Man Jia,Shuang Yu,Lixuan Chen,Rongyang Dai (通讯作者),Ronghao Wang (通讯作者).
转移性透明细胞肾癌(ccRCC)是一种致命的肾癌亚型。血管拟态(VM)被认为是肿瘤获取营养的替代途径,在肿瘤发展中起着关键作用。然而,VM的发展是否与帕唑帕尼的疗效相关尚不清楚。
通过体外和体内模型,研究发现与敏感对照组相比,帕唑帕尼耐药的ccRCC中VM的发展显著增加,这是由于IGFL2-AS1/AR/TWIST1信号通路的激活。研究通过一系列实验方法,包括细胞培养、质粒构建、病毒包装、组织染色、VM形成测定、RNA免疫沉淀、原位杂交、细胞核分离、RNA提取和定量PCR、西方印迹分析、荧光素酶报告基因检测、共识聚类分析、免疫组化染色和体内研究等,探讨了IGFL2-AS1/AR轴在帕唑帕尼耐药ccRCC中的作用。
A. 肿瘤生长曲线:
帕唑帕尼或对照处理的小鼠肿瘤生长曲线。每两天腹腔注射10 mg/kg帕唑帕尼。
B. CD31/PAS染色:
帕唑帕尼或对照处理的肿瘤切片进行CD31/PAS染色。左侧为代表性图像,右侧为统计分析。红色箭头:血管;黑色箭头:肿瘤细胞的血管拟态。
C. 血管拟态形成实验:
OSRC-2和A498细胞在帕唑帕尼耐药前后进行血管拟态形成实验。左侧为代表性图像,右侧为统计分析。
D. QPCR检测:
QPCR检测显示OSRC-2和A498细胞在帕唑帕尼耐药前后血管拟态相关基因的表达模式。基因表达水平以GAPDH mRNA为对照进行标准化。
E. Western blotting分析:
Western blotting显示OSRC-2和A498细胞在帕唑帕尼耐药前后AR蛋白的表达水平。GAPDH作为加载对照。
F. 短暂帕唑帕尼处理:
短暂的帕唑帕尼处理也促进了OSRC-2和A498细胞中AR的表达。GAPDH作为内部对照。
G. AR抑制实验:
使用shRNAs或恩杂鲁胺抑制AR,可以抑制OSRC-2和A498帕唑帕尼耐药细胞的血管拟态发展。左侧为代表性图像,右侧为统计分析。
H. AR抑制对TWIST1表达的影响:
使用shRNAs或恩杂鲁胺抑制AR,可以降低OSRC-2和A498帕唑帕尼耐药细胞中TWIST1的表达。GAPDH作为加载对照。
I. AR敲低后的敏感性:
敲低AR可以使OSRC-2和A498帕唑帕尼耐药细胞重新对帕唑帕尼治疗敏感。
J. AR表达水平与血管拟态的关系:
高AR表达的ccRCC倾向于具有更多的血管拟态数量,而低AR表达的ccRCC则相反。
要点:
研究揭示了AR介导的血管拟态是ccRCC对帕唑帕尼耐药的机制之一。
通过多种实验方法,如染色、QPCR、Western blotting等,验证了AR在耐药细胞中的表达和功能。
抑制AR可以减缓耐药细胞的血管拟态发展,并恢复对帕唑帕尼的敏感性。
A. 核糖体分析:
使用多核糖体分析方法和随后的qPCR检测,研究了A498和OSRC-2细胞在帕唑帕尼耐药前后与核糖体结合的AR mRNA的富集情况。
B. 热图分析:
热图显示了在转移性ccRCC中高表达的50个长链非编码RNA(lncRNA)。
C. qPCR检测:
qPCR检测了OSRC-2细胞在帕唑帕尼敏感和耐药状态下这50个转移性lncRNA的表达水平。基因表达水平以GAPDH mRNA为对照进行标准化。
D. shRNA抑制实验:
在OSRC-2(左)和A498(右)帕唑帕尼耐药细胞中,通过shRNA抑制lncRNA候选基因后,检测了AR的表达水平。GAPDH作为加载对照。
E. IGFL2-AS1敲低实验:
敲低IGFL2-AS1可以抑制OSRC-2和A498帕唑帕尼耐药细胞的血管拟态发展。左侧为代表性图像,右侧为统计分析。
F. IGFL2-AS1敲低对帕唑帕尼敏感性的影响:
敲低IGFL2-AS1可以恢复OSRC-2和A498帕唑帕尼耐药细胞对帕唑帕尼的敏感性。
G. IGFL2-AS1敲低对核糖体结合的影响:
敲低IGFL2-AS1可以减少AR mRNA与核糖体的结合。
要点:
研究确定了IGFL2-AS1是帕唑帕尼耐药ccRCC细胞中AR的上游调控因子。
通过多核糖体分析,发现AR mRNA在耐药细胞中与核糖体的结合增加。
热图分析揭示了转移性ccRCC中高表达的lncRNA。
敲低IGFL2-AS1可以抑制耐药细胞的血管拟态,并恢复其对帕唑帕尼的敏感性。
IGFL2-AS1敲低减少了AR mRNA与核糖体的结合,表明IGFL2-AS1可能通过调节AR的翻译来发挥作用。
A. IGFL2-AS1的FISH染色:
在帕唑帕尼耐药的ccRCC细胞中进行了IGFL2-AS1的荧光原位杂交(FISH)染色。
B. 细胞质-细胞核分离:
通过细胞质-细胞核分离实验来识别IGFL2-AS1的位置。细胞质RNA以GAPDH为标记;细胞核RNA以MALAT1为标记。
C. RNA免疫沉淀(RNA IP):
使用针对AR mRNA的4个反义探针进行RNA IP,以检测IGFL2-AS1的富集。AS表示反义探针;S表示正义探针。
D. IGFL2-AS1与AR mRNA的相互作用:
插图显示了IGFL2-AS1与AR mRNA的相互作用。
E. RNA结构分析:
左侧:使用RNAfold Webserver预测的IGFL2-AS1的RNA结构。右侧:截断映射显示含有AR结合位点的片段3#与AR mRNA相互作用。
F. 帕唑帕尼处理对AR表达的影响:
帕唑帕尼处理增加了OSRC-2和A498细胞中具有野生型5'-UTR的AR的表达,但未增加具有ATG缺失的5'-UTR的AR的表达。IGFL2-AS1增强了具有野生型5'-UTR的AR的表达,但未增强具有ATG缺失的5'-UTR的AR的表达。GAPDH作为内参。
G. 构建AR 5'-UTR启动子报告基因:
插图显示了野生型和突变型AR 5'-UTR携带的荧光素酶报告基因构建过程。
H. 帕唑帕尼和IGFL2-AS1对AR 5'-UTR活性的影响:
帕唑帕尼和IGFL2-AS1增强了OSRC-2细胞中野生型AR 5'-UTR携带的荧光素酶的活性,但未增强突变型AR 5'-UTR的活性。
要点:
研究表明IGFL2-AS1调节AR mRNA的上游开放阅读框(uORF)活性,并促进其翻译。
IGFL2-AS1位于细胞核中,并通过与AR mRNA相互作用来调节AR的表达。
IGFL2-AS1通过增强具有野生型5'-UTR的AR的表达来促进AR的翻译。
帕唑帕尼和IGFL2-AS1协同作用于野生型AR 5'-UTR,提高了活性。
A. IGFL2-AS1对ccRCC血管拟态形成和帕唑帕尼耐药的贡献:
野生型IGFL2-AS1,而不是突变型,在A498和OSRC-2细胞中增加了AR的表达。GAPDH作为正常化对照。
B. 野生型IGFL2-AS1对A498和OSRC-2细胞VM形成的影响:
野生型IGFL2-AS1,而不是突变型,增加了A498和OSRC-2细胞的血管拟态发展。左侧为代表性图像;右侧为统计分析。标尺:200 μm。
C. 野生型IGFL2-AS1对TWIST1表达的影响:
野生型IGFL2-AS1,而不是突变型,在A498和OSRC-2细胞中增加了TWIST1的表达。GAPDH作为加载对照。
D. 野生型IGFL2-AS1促进帕唑帕尼耐药的能力:
野生型IGFL2-AS1比突变型具有更强的能力促进A498和OSRC-2细胞的帕唑帕尼耐药性。
E. 恩杂鲁胺对IGFL2-AS1诱导的VM形成的影响:
恩杂鲁胺处理减轻了IGFL2-AS1在A498和OSRC-2细胞中诱导的血管拟态发展。左侧为代表性图像;右侧为统计分析。标尺:200 μm。
F. 恩杂鲁胺对IGFL2-AS1诱导的帕唑帕尼耐药性的影响:
恩杂鲁胺处理消除了IGFL2-AS1诱导的ccRCC细胞的帕唑帕尼耐药性。
G. 野生型IGFL2-AS1促进AR翻译的能力:
使用多核糖体分析(polysome profiling)法监测,野生型IGFL2-AS1比突变型具有更强的能力促进AR的翻译。
要点:
IGFL2-AS1的结合对于ccRCC血管拟态形成和帕唑帕尼耐药性是必需的。
野生型IGFL2-AS1能够增加AR和TWIST1的表达,促进血管拟态的发展,并增强帕唑帕尼耐药性。
恩杂鲁胺可以减轻IGFL2-AS1诱导的血管拟态发展和帕唑帕尼耐药性。
野生型IGFL2-AS1在促进AR翻译方面比突变型更有效。
A. IGFL2-AS1的m6A修饰:
pazopanib处理导致IGFL2-AS1的m6A修饰去甲基化,并由YTHDF2释放而稳定。
分析根据GSE161304 miCLIP数据集对IGFL2-AS1的m6A峰进行分析。红色框表示m6A峰。
B. m6A水平比较:
SRAMP预测的高置信度m6A位点。底部,m6A RIP揭示了帕唑帕尼敏感和耐药的ccRCC细胞中IGFL2-AS1的m6A水平差异。P1、P2是检测IGFL2-AS1指定区域的引物对。
C. m6A调节剂的表达水平:
帕唑帕尼敏感和耐药的ccRCC细胞中m6A调节剂的mRNA表达水平。RNA水平以GAPDH mRNA为对照进行标准化。
D. METTL14敲低:
使用两种独立的siRNA敲低METTL14,降低了A498和OSRC-2细胞中IGFL2-AS1的m6A水平。
E. METTL14敲低对IGFL2-AS1表达的影响:
使用两种独立的siRNA敲低METTL14,增加了A498和OSRC-2细胞中IGFL2-AS1的表达。GAPDH mRNA作为内参。
F. METTL14与IGFL2-AS1的关系:
METTL14在TCGA-KIRC中与IGFL2-AS1呈负相关。
G. dCas9 CRISPR-FTO系统:
dCas9 CRISPR-FTO结合sgRNA靶向IGFL2-AS1的A984相邻区域,显著增加了A498和OSRC-2细胞中IGFL2-AS1的表达。RNA水平以GAPDH mRNA为对照进行标准化。
H. dCas9 CRISPR-FTO系统对AR和TWIST1表达的影响:
dCas9 CRISPR-FTO结合sgRNA靶向IGFL2-AS1的A984相邻区域,增强了A498和OSRC-2细胞中AR和TWIST1的表达。GAPDH作为加载对照。
I. dCas9 CRISPR-FTO系统对VM形成的影响:
dCas9 CRISPR-FTO结合sgRNA靶向IGFL2-AS1的A984相邻区域,促进了A498和OSRC-2细胞的血管拟态(VM)发展。左侧为代表性VM图像;右侧为VM的统计分析。标尺:200 μm。
J. dCas9 CRISPR-FTO系统对IGFL2-AS1稳定性的影响:
dCas9 CRISPR-FTO结合sgRNA靶向IGFL2-AS1的A984相邻区域,增加了IGFL2-AS1的稳定性。使用5 μM ActD。
K. dCas9 CRISPR-FTO系统与YTHDF2的结合:
dCas9 CRISPR-FTO结合sgRNA靶向IGFL2-AS1的A984相邻区域,将其从YTHDF2的结合位点解离。
要点:
pazopanib处理导致IGFL2-AS1的m6A修饰去甲基化和稳定化。
METTL14的敲低降低了IGFL2-AS1的m6A水平并增加了其表达。
dCas9 CRISPR-FTO系统通过靶向IGFL2-AS1的A984相邻区域增强了其表达,促进了AR和TWIST1的表达,促进了血管拟态的发展,并增加了IGFL2-AS1的稳定性,同时解离了其与YTHDF2的结合。
A. 一致性矩阵:
当k=3时,一致性矩阵显示三个聚类。
B. VM相关基因的表达模式热图:
热图展示了个体聚类中VM相关基因的表达模式。
C. 生存时间分析:
VM_high(聚类3)的患者比VM_low(聚类1)的患者生存时间更短。
D. IGFL2-AS1在ccRCC中的表达:
在VM_high亚型的ccRCC中,IGFL2-AS1过表达。
E. IGFL2-AS1在ccRCC和正常肾脏组织中的表达水平:
与正常肾脏组织相比,ccRCC中IGFL2-AS1的表达水平明显更高。
F. IGFL2-AS1在远处转移ccRCC中的表达:
与局部控制的ccRCC相比,远处转移的ccRCC中IGFL2-AS1的表达更高。
G. 生存分析:
Kaplan-Meier生存分析显示,IGFL2-AS1水平高的ccRCC患者比IGFL2-AS1水平低的患者总体生存期(OS)、无病生存期(DSS)和无进展间隔(PFI)更差。
H. 多因素Cox回归分析:
多因素Cox回归分析年龄、性别、TNM、T期、分级和IGFL2-AS1的影响。
I. IGFL2-AS1为基础的诺模图预测模型:
基于IGFL2-AS1的诺模图预测模型。
J. IGFL2-AS1和VM基因TWIST1的表达相关性:
在TCGA-KIRC中,IGFL2-AS1和VM基因TWIST1的表达水平高度相关。
要点:
IGFL2-AS1在ccRCC中过表达,与血管拟态(VM)的形成相关,并且表达水平高的患者预后较差。
IGFL2-AS1的表达与患者的生存期、肿瘤进展和远处转移相关。
IGFL2-AS1可以作为ccRCC患者预后的独立预测因子,并可能用于构建预测模型。
IGFL2-AS1与VM相关基因TWIST1的表达水平高度相关。
A. 肿瘤生长曲线:
接受指定治疗的帕唑帕尼耐药OSRC-2肿瘤的生长曲线。每两天腹腔注射10 mg/kg帕唑帕尼和35 mg/kg恩杂鲁胺。
B. 肿瘤图像:
从接受治疗的牺牲小鼠中获取的肿瘤图像。
C. 肿瘤重量:
接受治疗的牺牲小鼠的肿瘤重量。
D. CD31/PAS和Ki67染色分析:
指定肿瘤切片的CD31/PAS和Ki67染色分析。左侧为代表性图像;右侧为统计分析。标尺:100 μm。
E. 肿瘤生长曲线和肿瘤重量:
接受siNC(8 mg/kg)或siIGFL2-AS1(8 mg/kg)处理的帕唑帕尼耐药OSRC-2肿瘤的生长曲线(左)和肿瘤重量(右)。
F. 肿瘤图像:
接受siNC或siIGFL2-AS1处理的牺牲小鼠的肿瘤图像。
G. CD31/PAS和Ki67染色分析:
siNC或siIGFL2-AS1处理的肿瘤切片的CD31/PAS和Ki67染色分析。标尺:100 μm。
H. 统计分析:
G中CD31/PAS和Ki67染色分析的统计分析。
I. m6A介导的IGFL2-AS1/AR轴如何控制ccRCC中的VM发展和帕唑帕尼耐药性的示意图:
描述m6A介导的IGFL2-AS1/AR轴如何控制ccRCC中的血管拟态(VM)发展和帕唑帕尼耐药性的示意图。
要点:
研究评估了使用恩杂鲁胺或siRNA靶向IGFL2-AS1来抑制帕唑帕尼耐药的ccRCC进展。
使用恩杂鲁胺和siIGFL2-AS1处理可以抑制帕唑帕尼耐药的OSRC-2肿瘤的生长。
肿瘤的血管生成和增殖减少,这表明了治疗的疗效。
图中的示意图说明了m6A修饰如何通过IGFL2-AS1/AR轴影响ccRCC的VM发展和耐药性。
这些结果支持了在临床前研究中使用恩杂鲁胺或siRNA靶向IGFL2-AS1作为ccRCC治疗策略。
IGFL2-AS1是一种带有m6A修饰的长编码RNA。
IGFL2-AS1通过METTL3/METTL14复合体去甲基化。
在慢性帕唑帕尼治疗过程中,由于YTHDF2的识别失败,IGFL2-AS1变得稳定。
IGFL2-AS1与雄激素受体(AR)mRNA的5'-UTR区域物理相互作用。
IGFL2-AS1中和了5'-uORF对AR翻译的负向调控。
使用恩杂鲁胺抑制AR活性或使用siRNA沉默IGFL2-AS1,都导致了帕唑帕尼耐药的透明细胞肾细胞癌(ccRCC)肿瘤生长的减缓。
体内异种移植小鼠模型验证了上述实验结果。
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