常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法
常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法:细胞培养中常见的生物污染类型有7种,分别是细菌污染,支原体污染,原虫污染,黑胶虫污染,真菌污染,病毒污染以及非细胞污染,真菌污染来源,一般是来自实验服,并且具有气候性,多雨······
发布时间:2026-06-03 09:00:00 细胞资源库平台 访问量:34
高级别浆液性癌(HGSC)是卵巢上皮性癌中最常见且死亡率最高的亚型,尽管有手术联合化疗的多模式治疗,预后仍不佳。免疫检查点抑制剂(如 PD-L1 抑制剂)是新兴治疗方向,但单一 PD-L1 表达作为预后或疗效预测标志物的价值存在争议。肿瘤微环境中的肿瘤浸润淋巴细胞(TILs),尤其是 CD8⁺细胞毒性 T 细胞,在肿瘤免疫中起关键作用。
来自印度昌迪加尔医学教育与研究研究生院病理科、细胞与妇科病理科、放疗肿瘤科、妇产科的团队在《APMIS》上发表题为Immunotyping in tubo-ovarian high-grade serous carcinoma by PD-L1 and CD8+ T-lymphocytes predicts disease-free survival的文章,纳入 100 例高级别浆液性癌(HGSC)患者,通过 PD-L1(程序性死亡配体 1)和 CD8⁺T 细胞进行免疫分型,明确 4 种免疫表型,其中 I 型(PD-L1⁺/CD8⁺)对应适应性免疫逃逸,患者无病生存期最差;单一 PD-L1 表达与预后无显著关联,而联合 PD-L1 和 CD8⁺T 细胞的免疫分型能更精准评估预后,为筛选免疫检查点抑制剂治疗获益人群(如 I 型患者)提供关键参考。
1.研究对象招募与分组:纳入 2015-2018 年确诊的 100 例 HGSC 患者,分为两组 ——50 例 upfront 手术 + 辅助化疗(HGSC-U 组)、50 例新辅助化疗(NACT)+ 间隔减瘤术(HGSC-PC 组);另纳入 16 例卵巢透明细胞癌(CCC)作为对照。HGSC-PC 组同时收集 NACT 前腹水细胞块。所有病例经 p53 免疫染色确认诊断。
2.肿瘤浸润淋巴细胞(TILs)评分:光学显微镜下评估肿瘤组织中淋巴样细胞的存在及定位(间质 / 瘤内),在 5 个高倍视野(400×)定量,按数量分为 0(无)、1(少量)、2(中等)、3(大量)级。
3.组织芯片构建与免疫组化检测:采用自动组织芯片系统构建组织芯片(2mm 芯径),纳入 HGSC-U 组、HGSC-PC 组(网膜转移灶 + NACT 前腹水细胞块)及扁桃体组织(阳性对照)。通过 Ventana 自动免疫染色仪检测 CD4、CD8、CD68(肿瘤相关巨噬细胞标志物)、PD-1、PD-L1,所用抗体均经验证。
4.免疫组化评分标准:CD4、CD8、CD68 按每 1000 个肿瘤细胞中阳性细胞百分比计算;PD-1、PD-L1 计算累积比例评分(CPS,肿瘤细胞 + 巨噬细胞阳性比例)和肿瘤细胞评分(TCS,仅肿瘤细胞阳性比例),结合 CD68 和 p53/p16 染色区分巨噬细胞和肿瘤细胞。
5.免疫分型与生存分析:基于 PD-L1 CPS≥10% 和 CD8⁺≥5% 分为 4 种免疫型 ——I 型(PD-L1⁺/CD8⁺)、II 型(PD-L1⁻/CD8⁻)、III 型(PD-L1⁺/CD8⁻)、IV 型(PD-L1⁻/CD8⁺);采用 Kaplan-Meier 法分析免疫分型与无病生存期(DFS)、总生存期(OS)的关联,Log-rank 检验比较差异。

图.1 肿瘤浸润淋巴细胞(TILs)的形态学评分
该图展示了 HGSC 中 TILs 的不同表达水平:图 1A 为无 TILs,1B 为 1+(少量),1C 为 2+(中等),1D 为 3+(大量),TILs 主要定位于间质或同时存在于间质与上皮内(图 1C、D)。结果显示,HGSC-PC 组的 TILs 评分显著高于 HGSC-U 组(p=0.006),提示新辅助化疗可诱导淋巴细胞浸润。

图.2 PD-L1 的免疫染色模式
该图呈现了 PD-L1 的表达定位:图 2A、B 为平行切片,p53 阳性肿瘤细胞(核阳性)同时表达 PD-L1(膜阳性);图 2C、D 为平行切片,CD68 阳性巨噬细胞(胞质阳性)表达 PD-L1(粗胞质颗粒阳性)。证实 PD-L1 可在 HGSC 的肿瘤细胞和巨噬细胞中表达,且表达模式不同。

图.3 PD-L1 表达水平与无病生存期关联
图 3A 为三组(HGSC-U、HGSC-PC、CCC)PD-L1 CPS 的组间比较,显示 HGSC-PC 组 PD-L1 CPS 显著高于 HGSC-U 组(p=0.0196);图 3B 为 PD-L1 CPS 与 DFS 的生存曲线,显示单一 PD-L1 CPS 与 DFS 无显著关联(p=0.9)。

图.4 四种免疫分型的典型染色特征
该图展示了四种免疫型的代表性染色:I 型(A:PD-L1⁺,B:CD8⁺)、II 型(C:PD-L1⁻,D:CD8⁻)、III 型(E:PD-L1⁺,F:CD8⁻)、IV 型(G:PD-L1⁻,H:CD8⁺),明确了各免疫型的分子表达特征。

图.5 免疫分型的分布与生存分析
图 5A 显示 HGSC-U 组和 HGSC-PC 组的免疫分型分布:HGSC-PC 组 I 型比例(11/50)高于 HGSC-U 组(1/50),III 型比例更低;图 5B 为免疫分型与 DFS 的生存曲线,显示 I 型 DFS 最差,与 III 型相比差异显著(p=0.01),四种免疫型整体 DFS 差异有统计学意义(p=0.04)。
该研究针对高级别浆液性癌(HGSC)预后差、免疫治疗标志物不明确的问题,通过 PD-L1 和 CD8⁺T 细胞构建四型免疫分型系统,首次证实联合两者的免疫分型比单一 PD-L1 指标更能精准评估患者无病生存期。核心发现包括:新辅助化疗可诱导 CD8⁺T 细胞浸润和 PD-L1 上调;I 型(PD-L1⁺/CD8⁺)对应肿瘤适应性免疫逃逸,预后最差,是免疫治疗的潜在获益人群;PD-L1 单独表达无预后价值,需结合 CD8⁺T 细胞水平综合判断。研究填补了 HGSC 免疫分型与预后关联的研究空白,为精准免疫治疗提供了可靠的患者筛选工具,未来需扩大样本量验证并探索其对免疫治疗疗效的预测价值。
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