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MMPP 通过抑制 MD2 依赖的 NF-κB 和 JNK/AP-1 通路在 THP-1 单核细胞中发挥抗炎作用

发布时间:2026-04-26 09:00:00 细胞资源库平台 访问量:42

Reporter THP1 Cell Line 细胞系是以 THP-1 为工具细胞,采用慢病毒感染的方式,构建稳定表达报告基因的细胞系,可用于检测信号通路转导。在被PMA、INF-α等刺激后,目标信号通路被激活,会启动下游特定基因的表达,这个表达过程会同时带动“报告基因”的表达。通过检测报告基因的信号强度,可以间接、定量、灵敏地衡量该信号通路的激活程度。

THP-1细胞本身来源于人单核细胞,可以分化为巨噬细胞样细胞,是研究先天免疫的经典模型。报告基因株的建立使其功能更强大。THP-1报告基因株是免疫学、炎症性疾病、药物研发等领域不可或缺的强大工具。它可以将一个复杂的、内在的生物学过程(信号通路激活/基因表达)转变为一个易于检测、可定量的物理信号(光或荧光)。这使得研究人员能够高通量地筛选药物,精确地量化免疫反应强度,直观地研究信号通路机制。

基本信息

英文标题:MMPP Exerts Anti-Inflammatory Effects by Suppressing MD2-Dependent NF-κB and JNK/AP-1 Pathways in THP-1 Monocytes

中文标题:MMPP 通过抑制 MD2 依赖的 NF-κB 和 JNK/AP-1 通路在 THP-1 单核细胞中发挥抗炎作用

发表期刊:《Pharmaceuticals》

影响因子:4.8

作者单位:

Department of Bioscience and Biotechnology, Konkuk University, Seoul 05029, Republic of Korea

College of Pharmacy and Medical Research Center, Chungbuk National University, Cheongju 28160, Republic of Korea

作者信息:

第一作者:Seonhwa Kim

通讯作者:Do-Young Yoon

研究背景

单核细胞是先天免疫核心细胞,在脂多糖(LPS)刺激下可大量释放促炎因子与炎症介质,引发过度炎症反应,参与脓毒症、急性肺损伤、自身免疫病等多种炎症疾病进程;LPS 作为革兰氏阴性菌外膜成分,通过CD14-MD2-TLR4轴激活下游信号,其中髓系分化蛋白 2(MD2)是 TLR4 识别 LPS 的必需共受体,LPS 结合 MD2 后诱导 TLR4 二聚化,进而激活NF-κB与JNK/AP-1两大核心炎症通路,驱动 TNF-α、IL-1β、IL-6、COX-2 等促炎因子高表达;(E)-2 - 甲氧基 - 4-[3-(4 - 甲氧基苯基) 丙 - 1 - 烯 - 1 - 基] 苯酚(MMPP)是新型合成小分子化合物,为 BHPB 的稳定类似物,前期研究证实其可通过下调 STAT3 通路发挥抗炎、抗癌作用,也可作为 PPARγ 激动剂改善胰岛素抵抗,但MMPP 能否作为 MD2 拮抗剂、阻断 LPS/TLR4 下游炎症信号尚未阐明;本研究以 LPS 诱导的 THP-1 单核细胞炎症模型为对象,探究 MMPP 的抗炎效应与分子机制,明确其对 CD14/MD2 结合、NF-κB 与 JNK/AP-1 通路活化、促炎因子表达的调控作用,为开发靶向 MD2/TLR4 的新型抗炎药物提供实验依据。

研究方法

本研究选用人单核细胞系 THP-1 为研究模型,在含 10% 胎牛血清的 RPMI 1640 培养基中、37℃、5% CO₂条件下培养;采用 MTS 法检测不同浓度 MMPP(2、4μg/mL)单独或联合 LPS(1μg/mL)处理 24h 后的细胞活力,确定无毒性作用浓度;THP-1 细胞经 MMPP 预处理 1h 后加 LPS 刺激 2h,通过 RT-qPCR 检测促炎因子 TNF-α、IL-1β、IL-6 及炎症介质 COX-2 的 mRNA 水平;LPS 刺激 30min/45min/90min 后收集细胞,通过 Western blot 检测 IKKα/β、IκBα 的磷酸化水平,分离胞浆与胞核蛋白检测 NF-κB p50/p65、AP-1 c-Jun/c-Fos 的核转位水平;利用免疫荧光染色观察 NF-κB p50 与 c-Jun 的核内定位;采用 PyRx、AutoDock Vina、PyMOL、LigPlot + 软件进行分子对接分析,预测 MMPP 与 CD14(PDB:4GLP)、MD2(PDB:2E59)的结合能力与作用位点;通过体外结合实验验证 MMPP 对生物素标记 LPS 与重组 MD2(rMD2)结合的竞争性抑制作用;所有实验独立重复 3 次,数据以均值 ± 标准差表示,采用单因素方差分析 + Tukey 检验,*P<0.05、**P<0.01、***P<0.001、****P<0.0001 为差异具有统计学意义。

实验结果

图 1 MMPP 的化学结构与细胞毒性检测

图 1 MMPP 的化学结构与细胞毒性检测

本图确定 MMPP 的安全作用浓度。A 图展示 MMPP 的化学结构,为 BHPB 的稳定合成类似物;B 图 MTS 细胞活力实验显示,2、4μg/mL MMPP 单独处理或联合 1μg/mL LPS 处理 THP-1 细胞 24h,细胞活力均无显著变化,无明显细胞毒性,确定 2、4μg/mL 为后续实验的安全作用浓度。

图 2 MMPP 对 LPS 诱导的促炎因子与介质 mRNA 表达的抑制作用

图 2 MMPP 对 LPS 诱导的促炎因子与介质 mRNA 表达的抑制作用

本图证实 MMPP 可显著抑制 LPS 诱导的炎症基因转录。THP-1 细胞经 MMPP 预处理 1h 后加 LPS 刺激 2h,RT-qPCR 结果显示,LPS 显著上调 TNF-α、IL-1β、IL-6、COX-2 的 mRNA 水平;MMPP 以剂量依赖方式显著抑制上述基因的表达,4μg/mL MMPP 的抑制效果显著优于 2μg/mL,证明 MMPP 可在转录水平阻断 LPS 诱导的炎症反应。

图 3 MMPP 对 LPS 诱导的 NF-κB 通路活化的抑制作用

图 3 MMPP 对 LPS 诱导的 NF-κB 通路活化的抑制作用

本图明确 MMPP 通过调控 IKK/IκBα 磷酸化阻断 NF-κB p50 核转位。A 图 Western blot 显示,LPS 显著诱导 IKKα/β 磷酸化,MMPP 剂量依赖性抑制 p-IKKα/β 水平;B 图显示 MMPP 显著抑制 IκBα 的磷酸化与降解,维持 IκBα 对 NF-κB 的胞内滞留;C 图核浆分离实验显示,LPS 显著促进 NF-κB p50、p65 核转位,MMPP 仅显著抑制 p50 核转位,对 p65 无明显影响;D 图免疫荧光验证,LPS 诱导 p50 大量入核,MMPP 显著减少核内 p50 荧光信号,证实 MMPP 通过抑制 IKK/IκBα 通路特异性阻断 NF-κB p50 核转位。

图 4 MMPP 对 LPS 诱导的 JNK/AP-1 通路活化的抑制作用

图 4 MMPP 对 LPS 诱导的 JNK/AP-1 通路活化的抑制作用

本图揭示 MMPP 靶向抑制 JNK/AP-1 通路。A 图 MAPKs 磷酸化检测显示,LPS 显著上调 p38 与 JNK 磷酸化,对 ERK 无影响;MMPP 剂量依赖性抑制 p-JNK 水平,仅高浓度对 p-p38 有轻微抑制作用;B 图核浆分离实验显示,LPS 促进 c-Jun、c-Fos 核转位,MMPP 仅显著抑制 c-Jun 核转位;C 图免疫荧光验证,LPS 诱导 c-Jun 大量入核,MMPP 显著减少核内 c-Jun 荧光信号,证实 MMPP 通过抑制 JNK 磷酸化阻断 AP-1 c-Jun 核转位。

图 5 MMPP 直接结合 CD14 与 MD2 并竞争性抑制 LPS-MD2 结合

图 5 MMPP 直接结合 CD14 与 MD2 并竞争性抑制 LPS-MD2 结合

本图阐明 MMPP 抗炎的上游分子机制。A/B 图分子对接显示,MMPP 与 CD14 的结合亲和力为 - 7.6kcal/mol,通过疏水作用与 Ala48、Val52 等残基结合,与 Cys51 形成氢键;与 MD2 的结合亲和力为 - 7.3kcal/mol,结合于 MD2 疏水口袋,与 Ile32、Leu54、Phe121 等残基形成疏水作用,结合能力与阳性对照地塞米松(Dex)相当;C 图体外结合实验显示,MMPP 可显著竞争性抑制生物素 - LPS 与 rMD2 的结合,证明 MMPP 通过直接结合 CD14 与 MD2,阻断 LPS 对 MD2/TLR4 的激活。

图 6 MMPP 抗炎作用机制模式图

图 6 MMPP 抗炎作用机制模式图

本图总结全文调控通路:MMPP 直接结合细胞膜上 CD14 与 MD2,竞争性阻断 LPS 与 MD2 的结合;进而抑制下游 IKKα/β/IκBα 磷酸化,阻止 NF-κB p50 核转位;同时抑制 JNK 磷酸化,阻止 AP-1 c-Jun 核转位;最终下调 TNF-α、IL-1β、IL-6、COX-2 等促炎因子与介质的表达,在 THP-1 单核细胞中发挥抗炎作用。

研究结论

本研究证实新型小分子化合物 MMPP 在无细胞毒性浓度下,可通过直接靶向结合 CD14 与 MD2竞争性阻断 LPS 对 MD2/TLR4 复合物的激活,进而双重抑制下游 NF-κB 与 JNK/AP-1 两大炎症信号通路:一方面抑制 IKKα/β 磷酸化与 IκBα 降解,特异性阻断 NF-κB p50 核转位;另一方面抑制 JNK 磷酸化,阻断 AP-1 c-Jun 核转位;最终显著降低 LPS 诱导的促炎因子 TNF-α、IL-1β、IL-6 及炎症介质 COX-2 的转录与表达,在 THP-1 单核细胞中发挥强效抗炎作用;该研究首次揭示 MMPP 作为MD2 拮抗剂的全新抗炎机制,为脓毒症、急性炎症等疾病的治疗提供了新型候选药物与作用靶点。

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