常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法
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发布时间:2025-12-26 17:22:45 细胞资源库平台 访问量:34
脑类器官作为神经科学研究的重要模型,其应用常受限于神经元成熟度不足 —— 突触复杂性低、电生理活性弱且分层结构不完善。星形胶质细胞通过分泌营养因子、调节突触形成等方式在神经元成熟中发挥关键作用,但传统培养体系难以模拟其体内调控效应。本研究建立了一种生成物种特异性星形胶质细胞条件培养基(ACM)的方案,通过提取小鼠和人类星形胶质细胞的分泌产物,显著促进人类 2D 神经细胞和 3D 前脑类器官的神经元成熟,为解决类器官成熟瓶颈提供了实用工具。
来自清华大学深圳国际研究生院等机构的 Honghui Zheng、Wenxin Xu、Shaohua Ma 团队在《STAR Protocols》期刊发表了题为“Protocol to generate species-specific astrocyte-conditioned medium for human organoid neuron maturation”的方案。
从小鼠幼崽(出生后 1-3 天)分离大脑皮质星形胶质细胞,经差异贴壁和机械振荡纯化(纯度 > 95%),培养至第 23-28 天收集条件培养基(MACM);
人类星形胶质细胞来自商业来源,培养至融合后收集条件培养基(HACM);
经离心去除细胞碎片、0.22μm 过滤灭菌,通过 BCA 蛋白定量和 SDS-PAGE 验证培养基质量。
质量控制:通过免疫荧光验证星形胶质细胞标志物(GFAP),排除微胶质细胞(IBA1)和少突胶质细胞(RIP)污染;蛋白质谱显示小鼠与人类 ACM 的分泌蛋白存在高度重叠,证实跨物种应用的可行性。
应用效果:
在 2D 培养中,ACM 可促进神经前体细胞(NPCs)分化为成熟神经元,增加 MAP2(成熟神经元标志物)表达;
在 3D 前脑类器官中,ACM 处理使神经元层厚度增加,钙成像和多电极阵列(MEA)显示电生理活性显著增强(如同步爆发活动增多),且分层结构更接近体内特征。
图 1:神经前体细胞和前脑神经元前体的单层培养流程
展示从人类 H9 胚胎干细胞诱导神经前体细胞(NPCs)的步骤 —— 通过 mTeSR Plus 培养基维持干细胞状态,经 STEMdiff SMADi 诱导分化为 NPCs,再用前脑神经元分化培养基诱导为前脑神经元前体,全程需 4-5 周。

图 2:未成熟前脑类器官的生成过程
明场图像显示类器官发育关键阶段 —— 第 0 天干细胞聚集成胚状体,第 9 天形成神经上皮结构,第 14 天嵌入 Matrigel 后开始分层。

图 3:星形胶质细胞培养与验证
小鼠星形胶质细胞经分离、纯化后呈典型扁平形态,免疫荧光显示高表达 GFAP,几乎无 IBA1 和 RIP 阳性细胞;
人类星形胶质细胞培养后呈梭形,融合后形成致密单层,同样验证 GFAP 阳性且无其他胶质细胞污染。

图 4:ACM 的质量控制
BCA 定量显示 MACM 和 HACM 的蛋白浓度显著高于空白对照;SDS-PAGE 凝胶染色显示两者均含丰富蛋白质条带(分子量分布广泛),且物种间存在共有的核心蛋白组分。

图 5:ACM 促进神经元成熟的效果
3D 类器官经 MACM 处理后,第 90 天的神经元层(TUJ1+/MAP2+)厚度显著增加,SOX2(神经前体标志物)表达减少,提示成熟加速;
钙成像显示 MACM 处理组的 ΔF/F 振幅更大,MEA 记录到更频繁的网络爆发活动,证实电生理活性增强;
蛋白质谱显示小鼠与人类星形胶质细胞分泌蛋白存在 304 种共有成分,为跨物种应用提供分子依据。

本方案详细描述了物种特异性星形胶质细胞条件培养基(ACM)的制备、质控及应用,通过标准化流程解决了脑类器官神经元成熟不足的问题。MACM 在促进 3D 前脑类器官分层、突触形成和电生理活性方面效果显著,且与人类 ACM 共享核心分泌蛋白,为跨物种研究提供实用工具。局限性包括依赖小鼠星形胶质细胞可能引入种间差异,以及血清成分带来的批次变异。该方案为神经发育研究、疾病建模及药物筛选提供了更接近体内状态的类器官模型,具有广泛的应用价值。
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