常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法
常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法:细胞培养中常见的生物污染类型有7种,分别是细菌污染,支原体污染,原虫污染,黑胶虫污染,真菌污染,病毒污染以及非细胞污染,真菌污染来源,一般是来自实验服,并且具有气候性,多雨······
发布时间:2025-04-10 09:25:07 细胞资源库平台 访问量:40
同源异体小鼠肿瘤模型是免疫肿瘤学(I/O)研究中不可或缺的临床前模型,但它们对免疫检查点抑制剂(ICIs)的反应有限,这可能是由于它们的固有低免疫原性。为了解决这一问题,研究人员通过将鸡卵清蛋白(OVA)这一高度免疫原性的蛋白质表达到同源异体肿瘤细胞中,开发了新的免疫原性同源异体模型。这些模型,如DC2.4-OVA和B16-OVA,显示出比它们的亲本细胞系更慢的肿瘤生长速度,这可能是由于免疫介导的排斥反应。更重要的是,这些OVA表达的模型对ICIs,特别是抗PD-1治疗,表现出更高的敏感性,这表明它们在增强T细胞介导的免疫反应方面具有潜力。此外,通过过继T细胞转移实验,研究人员验证了这些模型中存在肿瘤特异性记忆T细胞。这些结果表明,OVA工具细胞不仅增强了对ICIs的反应,而且为临床前免疫治疗评估提供了新的、具有更高免疫原性的同源异体模型,这对于I/O研究具有重要的意义。
英文标题:Critical Role of the Th1/Tc1 Circuit for the Generation of Tumor-Specific CTL during Tumor Eradication In Vivo by Th1-Cell Therapy
中文标题:Th1细胞疗法在体内肿瘤根除过程中Th1/Tc1回路对肿瘤特异性CTL生成的关键作用
发表期刊:《Cancer Science 》
影响因子:4.5
作者单位:
1. Division of Immunoregulation
2. Section of Disease Control
3. Institute for Genetic Medicine, Hokkaido University
作者信息:
Kenji Chamoto, Akemi Kosaka, Takemasa Tsuji
肿瘤免疫治疗的关键挑战在于如何有效诱导肿瘤特异性细胞毒性T细胞(CTL)。Th1和Th2细胞分别通过分泌IFN-γ和IL-4调控免疫应答,但二者在肿瘤微环境中的作用机制尚不明确。本研究旨在阐明Th1和Th2细胞在根除肿瘤过程中如何调控Tc1(IFN-γ+细胞毒性)和Tc2(IL-4+非细胞毒性)亚群。通过OVA特异性TCR转基因小鼠模型,研究者发现Th1细胞通过激活Th1/Tc1回路诱导肿瘤特异性CTL,而Th2细胞依赖Th2/Tc2回路诱导肿瘤坏死但缺乏长期免疫记忆。此外,研究探索了联合化疗药物环磷酰胺(CY)增强Th1细胞疗法的潜力。
动物模型:BALB/c小鼠接种表达OVA的A20淋巴瘤细胞(A20-OVA)建立肿瘤模型。
细胞治疗:从OVA特异性TCR转基因小鼠(DO11.10)分离CD4+ CD45RB+初始T细胞,体外诱导分化为Th1(IL-12+抗IL-4)或Th2(IL-4+抗IFN-γ)。
功能分析:将Th1/Th2细胞过继转移至肿瘤小鼠,分析脾细胞再刺激后的细胞因子(ELISA)和细胞毒性(51Cr释放实验)。
联合治疗:评估环磷酰胺(CY)与Th1细胞联合使用的疗效。
图1:Th1和Th2细胞疗法对A20-OVA肿瘤的抑制作用
实验通过将表达OVA抗原的A20淋巴瘤细胞(A20-OVA)接种至BALB/c小鼠体内建立肿瘤模型,待肿瘤生长至6-8 mm后,分别过继转移2×10⁷个OVA特异性Th1或Th2细胞。结果显示,Th1和Th2治疗组均能完全清除肿瘤,小鼠生存率显著提高(100%长期存活>60天),而对照组肿瘤持续生长并导致小鼠死亡。该结果首次证明Th1和Th2细胞疗法在肿瘤根除中具有同等效力,但后续实验揭示两者机制存在本质差异:Th1依赖细胞免疫(CTL介导杀伤),而Th2依赖坏死性炎症反应(如IL-4诱导的嗜酸性粒细胞浸润)。
图2:Th1或Th2治疗后脾细胞再刺激的细胞因子动力学
从Th1或Th2治疗痊愈的小鼠中分离脾细胞,用OVA抗原体外再刺激4天,每日检测培养上清中IFN-γ和IL-4水平。结果显示,Th1治疗组的脾细胞在再刺激后持续分泌高浓度IFN-γ(第4天达峰值约800 pg/ml),而IL-4几乎无分泌;相反,Th2治疗组的脾细胞主要分泌IL-4(第4天约300 pg/ml),IFN-γ水平极低。这一动态变化表明,Th1治疗诱导了抗原特异性Th1/Tc1极化,而Th2治疗偏向Th2/Tc2极化,提示体内免疫记忆的分化方向由初始治疗的T细胞亚型决定。
图3:Th1和Th2治疗后CD4+及CD8+ T细胞的细胞因子分泌特征
通过细胞内染色技术分析再刺激后T细胞的表型,发现Th1治疗组的CD4+ T细胞中90%以上为IFN-γ+ Th1细胞,CD8+ T细胞中34.6%为IFN-γ+ Tc1(仅8%为IL-4+);而Th2治疗组的CD4+ T细胞中超过80%为IL-4+ Th2细胞,CD8+ T细胞中49.1%为IL-4+ Tc2(仅15.1%为IFN-γ+)。这一结果直接证实了Th1/Tc1和Th2/Tc2的免疫极化现象,并表明CD8+ Tc1的生成依赖于Th1细胞的体内辅助作用,而Th2细胞无法有效激活CTL毒性。
图4:Tc1而非Tc2介导肿瘤特异性细胞毒性
从Th1或Th2治疗痊愈小鼠中分离的脾细胞经OVA再刺激后,分选CD4+和CD8+ T细胞进行体外杀伤实验。结果显示,Th1治疗组CD8+ Tc1对A20-OVA肿瘤细胞具有显著特异性杀伤活性(效靶比50:1时杀伤率约60%),但对无关肿瘤CMS-7无作用;而Th2治疗组的CD8+ Tc2几乎无杀伤能力(效靶比50:1时<10%)。此外,Th1治疗组的CD4+ T细胞(Th1)也表现出微弱杀伤活性(约15%),可能与分泌IFN-γ直接抑制肿瘤生长有关。该数据明确了Tc1是Th1疗法中肿瘤根除的直接效应细胞,而Tc2不具备功能性细胞毒性。
图5:环磷酰胺(CY)联合Th1疗法增强抗肿瘤效果
在A20-OVA肿瘤模型中,单独使用低剂量Th1细胞(5×10⁶)无法抑制肿瘤生长,但联合环磷酰胺(CY,40 mg/kg单次腹腔注射)后,肿瘤迅速消退并完全清除。联合治疗组的肿瘤体积在治疗8天后缩小至不可检测水平,而单独Th1组肿瘤持续进展。机制上,CY可能通过以下途径增强疗效:(1)清除免疫抑制性调节T细胞(Treg);(2)诱导肿瘤微环境中巨噬细胞从IL-10分泌型(M2)向IFN-γ分泌型(M1)转化;(3)促进Th1细胞体内扩增。这一发现为“化疗-免疫联合治疗”策略提供了实验依据,表明CY可突破Th1疗法的剂量限制,提升临床可行性。
Th1细胞通过激活Th1/Tc1回路诱导高水平的IFN-γ和肿瘤特异性CTL(Tc1),有效清除肿瘤并建立免疫记忆;而Th2细胞通过Th2/Tc2回路诱导IL-4+ Tc2,虽引起肿瘤坏死但缺乏细胞毒性。联合CY显著增强Th1疗法的抗肿瘤效果,提示“化疗-免疫联合治疗”可通过增强Th1/Tc1回路实现肿瘤根除。该研究为基于Th1的肿瘤免疫治疗提供了理论依据。
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