常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法
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发布时间:2026-05-15 17:03:28 细胞资源库平台 访问量:32
树突状细胞是最强效的抗原呈递细胞,CD8αα 同源二聚体长期被用作区分小鼠淋巴样 DC(CD8α⁺)和髓样 DC(CD8α⁻)的标志物,而 T 细胞表达的是 CD8αβ 异源二聚体。此前研究未发现 DC 表面 CD8αα 的功能,仅将其视为谱系标记。
来自美国印第安纳大学医学院免疫生物学中心的团队在《Immunology Letters》上发表的题为Dendritic Cell – T Cell Interactions: CD8αα Expressed on Dendritic Cells Regulates T Cell Proliferation的文章。
研究成果:通过野生型与 CD8α 缺陷型小鼠模型、CD8α 逆转录病毒转导实验,证实 DC 来源的 CD8αα 可增强 T 细胞增殖和 IL-12 分泌;首次发现 DC(而非仅 T 细胞)表达 LCK 激酶,且 LCK 与 CD8αα 结合,为 CD8αα 的功能机制提供关键证据。
1.实验动物:使用 6-8 周龄 C57BL/6 小鼠、CD8α 基因缺陷小鼠(B6.129S2- Cd8a⁺mIMAK)及其野生型同窝小鼠,饲养于 SPF 环境,实验经动物伦理委员会批准。
2.DC 分离与培养:
脾脏 DC:脾脏单细胞悬液经红细胞裂解后,用 CD11c 微珠分选(纯度 > 90%)。
骨髓来源 DC(BMDC):小鼠股骨骨髓细胞经 Ficoll 分离低密度假单核细胞,在含 GM-CSF(100 ng/ml)和 IL-4(100 ng/ml)的培养基中培养 12 天,第 11 天经 CD11c 抗体染色验证。
3.细胞系培养:D10.G4.1 T 细胞杂交瘤(CD4⁺)在含 10% T 细胞刺激培养基和 IL-1(10 pg/ml)的 cRPMI 中培养;DC2.4(髓样 DC 系)和 FSDC(胎儿皮肤来源 DC 系)按常规方法培养。
4.混合淋巴细胞反应(MLR):DC 经 γ 射线照射(2000 cGy)后作为刺激细胞,与 Balb/c 小鼠 CD90⁺脾 T 细胞或 D10.G4.1 T 细胞共培养;2 天后加入 [³H] 胸腺嘧啶核苷脉冲 18 小时,检测 T 细胞增殖(以 CPM 值表示)。
5.免疫印迹与免疫沉淀:DC 裂解后经 SDS-PAGE 电泳、转膜,用抗 LCK 抗体检测蛋白表达;CD8α⁺/CD8α⁻ DC 裂解液经抗 CD8α 抗体免疫沉淀后,用抗 LCK 抗体进行 Western blot 检测结合关系。
6.逆转录病毒转导:构建含 CD8α cDNA 和 EGFP 的 MIEG3 逆转录病毒载体,转染 Phoenix Eco 细胞制备病毒上清;骨髓细胞经 RetroNectin 包被的培养板感染病毒,48 小时后经 FACS 分选 EGFP⁺细胞,扩增培养后验证 CD8α 表达。
7.ELISA 检测:收集 MLR 共培养上清,采用 BD Pharmingen 试剂盒检测 IL-12(p70)水平。
8.统计分析:使用 GraphPad Prism 4.0 进行双尾非配对 t 检验,p<0.05 视为差异显著。

图 1:CD8α⁺ DC 诱导 T 细胞增殖的能力更强
野生型(WT)BMDC 诱导 D10.G4.1 T 细胞(图 1B)和异基因 CD4⁺脾 T 细胞(图 1C)的增殖能力,显著高于 CD8α 缺陷型(CD8α⁻/⁻)BMDC;流式细胞术验证野生型 BMDC 中约 3.1% 为 CD8α⁺亚群(图 1A);两组 DC 的共刺激分子(CD80、CD86、CD40、I-Aᵇ)表达无差异,排除表型差异干扰。


图 2:CD8α 转导增强 DC 的 T 细胞激活功能
构建含 CD8α 的逆转录病毒载体(MIEG3-CD8α),转导 BMDC 后成功表达 CD8α mRNA 和蛋白(图 2A-B);CD8α⁺ BMDC 诱导 D10.G4.1 T 细胞增殖的能力呈剂量依赖性增强(较 CD8α⁻ BMDC 高 4 倍,p<0.05,图 2C);共培养体系中,CD8α⁺ BMDC 分泌的 IL-12(p70)水平较 CD8α⁻ BMDC 高 6 倍(p<0.01,图 2D),单独培养的 DC 几乎不分泌 IL-12。

图 3:DC 表达 LCK 并与 CD8α 结合
从 C57BL/6 小鼠脾脏分选的 CD8α⁺ DC 中,LCK 蛋白表达水平显著高于 CD8α⁻ DC(图 3B);DC2.4、FSDC 细胞系不表达 LCK,而脾 T 细胞和 D10.G4.1 T 细胞均表达 LCK(阳性对照);免疫沉淀实验显示,LCK 可与 DC 表面的 CD8α 共沉淀,证实两者存在结合(图 3C)。
本研究首次证实树突状细胞表面的 CD8αα 同源二聚体并非仅作为谱系 / 成熟标志物,还具有调控 T 细胞活化的功能。核心机制为:CD8α⁺ DC 通过表达并结合 LCK 激酶,增强其诱导异基因 T 细胞增殖的能力,并促进共培养体系中 IL-12 的分泌;CD8α 缺陷型 DC 则丧失该增强效应,而 CD8α 转导可恢复并强化此功能。研究打破了 “LCK 仅表达于 T 细胞” 的传统认知,揭示 DC 来源 LCK 在 CD8αα 介导的 T 细胞激活中的关键作用,补充了 DC-T 细胞相互作用的分子机制,为理解 DC 亚群功能特异性及免疫调控网络提供新视角。
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