常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法
常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法:细胞培养中常见的生物污染类型有7种,分别是细菌污染,支原体污染,原虫污染,黑胶虫污染,真菌污染,病毒污染以及非细胞污染,真菌污染来源,一般是来自实验服,并且具有气候性,多雨······
发布时间:2026-05-13 16:40:31 细胞资源库平台 访问量:18
小胶质细胞作为中枢神经系统的固有免疫细胞,在维持神经稳态、调节神经发育与炎症反应、参与组织修复等过程中发挥关键作用,更是阿尔茨海默病、帕金森病等神经退行性疾病发病机制研究的核心靶点。目前常用的原代小胶质细胞分离方法中,磁珠分选(MACS)和流式分选(FACS)虽纯度高,但成本高、回收率低;传统摇晃法操作简便但细胞纯度不足。而永生细胞系(如 BV2)存在基因表达异常、功能模拟性差等缺陷,无法准确还原生理状态下的小胶质细胞特性。因此,开发一种高效、经济、高保真的原代小胶质细胞分离方案,对神经科学机制研究具有重要意义。
来自南昌大学第一附属医院神经外科、江西神经疾病重点实验室的团队,在《Bio-protocol》上发表了这篇题为Revisiting Primary Microglia Isolation Protocol: An Improved Method for Microglia Extraction的文章,通过优化传统混合胶质细胞培养摇晃法,成功获得高纯度、高产量、高活力的原代小胶质细胞,同时缩短实验周期、减少动物使用量及整体成本。
本研究优化了传统混合胶质细胞培养摇晃法,核心步骤分为 5 步,全程无需抗生素或抗真菌试剂:
1.实验材料准备:选用出生 1-2 天的 SNCA A53T 转基因小鼠或 C57BL/6J 小鼠,以及 DMEM/F12 培养基、B27 添加剂、巨噬细胞集落刺激因子(M-CSF)、胎牛血清(FBS)等试剂,搭配细胞培养瓶、离心管、70μm 细胞筛等耗材及 CO₂ 培养箱、摇床等设备。
2.原代胶质细胞分离与初期培养:颈椎脱臼处死小鼠后,75% 乙醇消毒 5 分钟,无菌条件下取完整脑组织,去除脑膜和血管后分离皮层与海马组织;用 0.25% 胰酶消化 3 分钟,FBS 中和后经 70μm 细胞筛过滤,300×g 离心 5 分钟,沉淀重悬于 20% FBS 培养基中,接种至 T25 培养瓶,37℃、5% CO₂ 培养 24 小时。
3.小胶质细胞增殖诱导与分层培养:24 小时后更换培养基并清洗去除漂浮碎片,加入含 20% FBS 的培养基继续培养 5 天;第 5 天细胞形成分层生长(底层为星形胶质细胞和成纤维细胞,上层为小胶质细胞),添加 20 ng/mL M-CSF 促进小胶质细胞增殖,培养至第 8 天。
4.小胶质细胞分离纯化:第 9 天将培养瓶密封,置于 37℃ 摇床以 200 rpm 摇晃 2 小时,收集悬浮的小胶质细胞并重新接种;原培养瓶补充培养基继续培养 5 天后,可通过相同方法二次收获小胶质细胞。
5.细胞鉴定与功能验证:采用免疫荧光染色(小胶质细胞标志物 Iba1、星形胶质细胞标志物 GFAP)和流式细胞术(表面标志物 CD11b)验证细胞纯度;通过 LPS(1 μg/mL)刺激,检测 CD40 表面表达及 IL-6、IL-1β 等细胞因子水平,验证细胞功能活性。

图 1:培养第 1-2 天:脑源性细胞形态及纯化前预处理效果
图 A 展示了第 1 天原代细胞分离的流程示意图,明确了从取脑到接种培养的核心步骤;图 B 对比了培养第 2 天换液前后的细胞形态:换液前可见大量漂浮的细胞聚集物和组织碎片,换液清洗后,贴壁细胞形态更清晰,有效去除杂质,为后续胶质细胞分层生长和小胶质细胞纯化奠定了基础,保障了初期培养环境的稳定性。

图 2:培养第 5-9 天:小胶质细胞增殖与纯化后形态特征
图 A 呈现了第 5-9 天的细胞培养流程,突出了 M-CSF 诱导增殖和摇床分离的关键步骤;图 B 显示,第 5 天细胞已形成明显分层,上层为圆形或椭圆形的小胶质细胞;第 8 天细胞碎片显著减少,小胶质细胞形态均一性提升;第 9 天经摇床分离纯化后,获得的小胶质细胞纯度显著提高,且通过二次培养可实现第二批细胞收获,证明该方案具有高效的细胞产量优势。

图 3:小胶质细胞纯度鉴定与功能验证
图 A 免疫荧光染色结果显示,分离的细胞中 Iba1 标志物阳性(小胶质细胞)比例高,GFAP 阳性(星形胶质细胞)比例极低,直观证明细胞纯度;图 B 流式细胞术通过 CD11b 特异性标记,进一步量化验证了小胶质细胞的高纯度;图 C 显示 LPS 刺激后,小胶质细胞 CD40 表面表达显著上调,表明细胞可正常激活;图 D qPCR 结果显示,LPS 刺激组促炎因子(IL-6、IL-1β、TNF-α)表达升高,抗炎因子(TGF-β)表达变化符合炎症反应规律,证实分离的小胶质细胞具有正常的免疫功能活性,可用于后续机制研究。
本研究针对传统原代小胶质细胞分离方法的不足,优化了混合胶质细胞培养摇晃法,通过在初期培养添加 B27 添加剂维持细胞存活与功能,后期补充 M-CSF 促进小胶质细胞增殖,仅需 9 天即可获得纯度约 90%、单只小鼠产量达 1.6×10⁶ 个的高活力原代小胶质细胞,且无需使用抗生素,降低了实验成本和动物使用量,同时通过免疫荧光、流式细胞术及功能验证证实了细胞的纯度和活性。该改良方案为神经退行性疾病(如帕金森病)、脑损伤等相关研究提供了优质、可控的体外模型,具有重要的实验应用价值。
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