大鼠胚胎成纤维细胞分离试剂盒

产品描述

成纤维细胞(Fibroblast)是疏松结缔组织的主要细胞成分，由胚胎时期的间充质细胞分化而来。刚分离的胚胎成纤维细胞(Embryonic fibroblast)呈圆形、折光性良好，悬浮于培养基中。30 min细胞贴壁，其中部分开始伸出伪足，表现为小的突起;6h后细胞基本贴壁完全，伸展成梭形，胞核清晰，分布较均匀，散在生长，不聚集成团;细胞生长迅速，5-7天即呈融合状态，细胞排列紧密，有的交叉重叠生长，平坦、胞体较大，细胞质透明，细胞核较大，呈椭圆形，颜色淡。细胞融合，并彼此连接成网状;细胞呈突起的纺锤形或星形的扁平分布。是ES细胞培养常用的饲养层细胞，能产生抑制ES细胞自主分化和促进ES细胞增殖的因子，故能有效地促进ES细胞的增殖并维持其未分化特性和多潜能性，且分泌效果优于外源添加的一些因子，可以为ES细胞的培养提供类似于体内的微环境，故在研究哺乳动物ES细胞中得到广泛使用。

适用范围

该试剂盒适用于不同品系的孕13.5 d大鼠提取原代胚胎成纤维细胞。

规格

本试剂盒规格为5次(以1只胎鼠为1次计)

运输和存储条件

2-8 ℃保存与运输，保质期为参考下表。所有组分开封后，有效期为 6-8 周，建议尽快使用。

配套培养基信息

表1. 分离培养试剂盒组成信息

分离步骤

实验前准备：大鼠胚胎成纤维细胞组织专用消化液I、II、III、组织处理缓冲液、大鼠胚胎成纤维细胞专用完全培养基;实验需自备含10%FBS完全培养基、手术器械、6 cm/10 cm培养皿、离心管若干。

一、大鼠胚胎成纤维细胞提取：下面以SD大鼠为例

1. 配鼠：实验开始前，于当天18:00-19:00时将雌、雄大鼠按3:1比例合笼。第2天8:00时分笼，并观察雌性大鼠有无阴栓，有阴栓确定为怀孕，记0.5 d，并分开单独饲养。

2. 取孕13.5 d大鼠,断颈处死，置于体积分数为75%酒精消毒3 min。无菌打开孕鼠腹腔，可见腹腔两侧呈“V”字型串珠样子宫，用镊子提起子宫(不能碰到皮毛，以防污染)，并用眼科剪去除子宫系膜和结缔组织，剥离子宫。将子宫放入含有大鼠胚胎成纤维细胞组织处理缓冲液6 cm皿中，漂洗两三遍，去除淤血。

3. 用眼科剪和镊子去除胎盘、羊膜等胚胎外组织，取出胚胎放入另一平皿，用组织处理缓冲液洗涤，直到没有血迹为止。

4. 用眼科剪和镊子去除胚胎的头部、四肢及内脏，留取躯干部(注:头部、四肢及内脏需去除干净)，将躯干部放入皿中，用组织处理缓冲液洗涤1次

5. 用眼科剪将胚胎躯干部剪碎成糊状，加入5 mL大鼠胚胎成纤维细胞组织处理缓冲液混匀移入离心管中，自然沉降3 min后，将上清液轻轻吸出弃掉。

6. 加入3 mL大鼠胚胎成纤维细胞组织专用消化液I轻轻吹打后室温下自然沉降2 min，将上清液轻轻吸出弃掉。

7. 加入3 mL大鼠胚胎成纤维细胞组织专用消化液II轻轻吹打后室温下消化3 min，将上部的单细胞悬液轻轻吸出放入另一离心管中，加等量培养基终止消化，重复消化两次(一共3次)。若还有未消化的组织，再加入3 mL大鼠胚胎成纤维细胞组织专用消化液III轻轻吹打至完全消化,终止消化。

8. 混匀离心管收集所有细胞悬液，自然沉降1 min，将大块沉淀吸出弃掉。

9. 800 rpm离心5 min，弃上清，使用大鼠胚胎成纤维细胞专用完全培养基重悬至5 mL。计数，按5×106/瓶接种到T25培养瓶中，一个T25培养瓶添加5-6 mL大鼠胚胎成纤维细胞专用完全培养基，记为原代(P0)。37℃、5% CO2培养箱中培养24 h。

10. 24小时后，换液以去除未贴壁的细胞及碎片，细胞融合至80%-90%时，消化，按1∶3-1∶4比例传代培养。

二、大鼠胚胎成纤维细胞传代：

贴壁细胞

1.吸弃原培养液上清。

2.加入2-3 mL PBS润洗细胞，吸弃PBS.

3.加入1-2 mL重组胰蛋白酶消化液至培养瓶中，并轻轻晃动培养瓶至消化液浸润所有细胞，放入37℃培养箱消化细胞2-3 min。

4.倒置显微镜下观察，待细胞明显变圆有间隙后(全程请不要拍打培养瓶)，再加入3-5 mL含10% 血清的培养基终止消化。

5.用巴氏管轻轻吹打混匀、分散细胞，1000 rpm，离心3-5min以去除残留胰酶。

6.去掉上清，按1∶3-1∶4比例传代培养。

注意事项

1. 全程分离操作过程建议在冰上进行，分离大鼠胚胎成纤维细胞时应避免过度消化、过度重悬等操作导致细胞损伤。

2. 大鼠胚胎成纤维细胞传代时使用重组胰蛋白酶(含EDTA，不含酚红)消化液消化。

3. 大鼠胚胎成纤维细胞专用消化液、培养基中含有微生物生长所需的营养成分，请在超净工作台内打开，按照所需要量分装，并且用封口膜封住瓶口，即取即用，以避免污染。