常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法
常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法:细胞培养中常见的生物污染类型有7种,分别是细菌污染,支原体污染,原虫污染,黑胶虫污染,真菌污染,病毒污染以及非细胞污染,真菌污染来源,一般是来自实验服,并且具有气候性,多雨······
发布时间:2022-05-17 14:42:17 细胞资源库平台 访问量:181
Vero细胞由日本学者Yasumura和Kawakita两人在1962年正式从非洲绿猴肾脏分离,1964年6月15日B. Simizu将其从千叶大学带到国立健康研究所(NIH)国立过敏及传染病研究所热带病毒实验室时,已传至第93代。
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1)Vero细胞来源方便,明确,易建库及保存,可连续传代,生长速率快
2)Vero细胞遗传性状稳定,具有良好的生物安全性
3)Vero细胞生产的病毒滴度高,并能较好的依附于片状载体/微载体,易于在生物反应器中进行放大,因此Vero细胞被越来越多地用于生产病毒类疫苗,并使用生物反应器工艺取代了传统转瓶工艺来进行生产。
提前开启紫外照射30min消毒灭菌,工作台开灯通风10min,用75%酒精擦拭台面。
器材耗材:玻璃瓶、培养瓶、培养皿、巴士管、离心管、移液枪、枪头、滤器、吸管、多孔培养皿、6cm皿、10cm皿,培养瓶等。
试剂:MEM培养液、缓冲液、PBS、消化液、血清、抗生素。
vero细胞培养基:MEM+10%FBS+1%PS
vero细胞传代比例:1:2至1:3,每周 2-3次
vero细胞代次如何确定:如果vero细胞密度达80%-90%,即可进行传代培养
生长条件:气相:95%空气+5%二氧化碳;温度:37℃
冻存条件:无血清冻存液(或者冷冻保存液:90%血清,10%DMSO,现用现配),液氮储存
消化时间:1-3min(视细胞情况而定)
1.运输用的培养基(灌液培养基)不能再用来培养vero细胞,请按照说明书细胞培养条件新配制的完全培养基来培养细胞。
2.vero细胞首次传代建议1:2传代就是1个T25瓶传2个T25瓶或者2个6cm皿,不是1个T25瓶传2个10cm皿。
1.将含有1 mL vero猴肾细胞悬液的冻存管在 37℃水浴中迅速摇晃解冻,加4 mL培养基混合均匀;
2.在1000 rpm条件下离心4 min,弃去上清液,加1-2 mL培养基后吹匀;
3.将所有vero猴肾细胞悬液加入含适量培养基的培养瓶中培养过夜(或将细胞悬液加入6cm皿中,加入约4 mL培养基,培养过夜);
4.第二天换液并检查vero细胞密度。
如果vero细胞密度达80%-90%,即可进行传代培养。
1.弃去培养上清,用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。
2.加1 mL消化液(0.25%Trypsin-0.02% EDTA)于培养瓶中,使消化液浸润所有细胞,将培养瓶置于37℃培养箱中消化1-3 min(视细胞情况而定),然后在显微镜下观察细胞消化情况,若细胞大部分变圆并脱落,迅速拿回操作台,加2-3ml完全培养基终止消化。轻轻打匀后装入无菌离心管中,1000 rpm离心5 min,弃去上清液,补加1-2 mL培养液后吹匀。
3.将细胞悬液按1:2比例分到新的含8 mL培养基的新皿中或者瓶中,置于培养箱中培养。
待vero细胞生长状态良好时,可进行细胞冻存。下面 T25 瓶为例;
1.收集vero细胞及细胞培养液,装入无菌离心管中,1000 rpm条件下离心4 min,弃去上清液,用PBS清洗一遍,弃尽PBS,进行细胞计数。
2.根据vero细胞数量加入无血清细胞冻存液,使细胞密度5×106~1×107/mL,轻轻混匀,每支冻存管冻存1mL细胞悬液,注意冻存管做好标识。
3.将冻存管放入-80℃冰箱,24 h后转入液氮灌储存。记录冻存管位置以便下次拿取。
我们在培养细胞时,通常会出现很多问题,比如细胞状态不好,生长缓慢,贴壁细胞不贴壁等问题。 那么这些出现这些问题的原因是什么呢?又有哪些解决办法呢?
1.vero细胞用于检查大肠杆菌毒素。大肠杆菌毒素最初就因此细胞系而被命名为Vero毒素,后来被称为志贺菌素样毒素,因为它与在痢疾志贺菌中分离出来的志贺菌素很相似。
2.作为培养病毒的细胞宿主。比如:测定某种药物对病毒复制速度的影响,检验是否存在狂犬病毒或者为了研究目的培养病毒。
3.作为真核寄生虫的宿主细胞,尤其是锥体虫属。
4.用于疫苗生产中的病毒培养基质细胞,是在限定代次内不致癌的异倍体细胞,WHO批准可以用于人类疫苗的生产基质。
Vero细胞系是连续的非整倍体细胞 。连续细胞系可以经过许多分裂周期而不衰老。非整倍体是指细胞中的染色体数目与通常的不同。Vero 细胞有干扰素分泌缺陷的特点;与其它普通哺乳动物细胞不同,当被病毒感染时,它不能分泌干扰素,但它仍然具有α/β-干扰素的受体,所以对于其它来源的干扰素仍有正常的反应。
消化离心弃上清后,PBS重悬洗洗,750rpm低速离心4分钟,重新铺下,铺回去镜下观察一下是不是干净的。
原因分析
1.更换不同培养基或血清导致。
解决方法:分析新培养基与原培养基的成分,比较新血清与原血清支持细胞生长实验,让细胞逐渐适应新培养基。
2.有少量细菌或真菌污染。
解决方法: 用含抗生素培养液培养,如发现污染,尽量丢弃培养物。
3.试剂保存不当导致。
解决方法:血清需要保存在-10到-20℃。培养基需在2-8℃避光保存。含血清完全培养液在2-8℃保存,要在1周内用完。
4.接种细胞起始浓度太低。
解决方法:增加接种细胞起始浓度。
5.细胞已老化。
解决方法:引入新的保种细胞,重新培养。
6.支原体污染。
解决方法:吸取部分培养基,离心得上清,检测支原体。清洁支架和培养箱。可在培养皿里加入支原体去除剂清除,但如发现支原体污染,尽量建议丢弃。
贴壁细胞培养不贴壁原因及解决方法
1.胰酶消化过度导致。
解决方法:缩短胰酶消化时间或降低胰蛋白酶浓度 。
2.支原体污染 。
解决方法:吸取培养2-3的培养基,检测支原体。清洁支架和培养箱。如发现支原体污染,丢弃培养物。
3.培养基pH值过碱(NaHCO3分解)。
解决方法:使用无菌醋酸溶液调整pH值或充入无菌CO2。
4.细胞老化 。
解决方法:购买新的代数较低的细胞。
5.接种细胞起始浓度太低或太高。
解决方法:调节最佳接种细胞浓度。
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