常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法
常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法:细胞培养中常见的生物污染类型有7种,分别是细菌污染,支原体污染,原虫污染,黑胶虫污染,真菌污染,病毒污染以及非细胞污染,真菌污染来源,一般是来自实验服,并且具有气候性,多雨······
发布时间:2025-03-21 17:00:47 细胞资源库平台 访问量:83
英文标题:Development of a novel HER2-CAR monocyte cell therapy with controllable proliferation and enhanced anti-tumor efficacy
中文标题:具有可控增殖和增强抗肿瘤疗效的新型HER2-CAR单核细胞疗法的开发
发表期刊:《Chinese Medical Journal》
影响因子:6.1
作者单位:北京大学第五临床医学院、中国医学科学院老年医学研究所、北京大学第九临床医学院北京世纪坛医院妇产科
作者信息:Bing Yang, Xiaoxue Wang, Xundong Wei, Jie Ma.
1. 细胞免疫疗法,特别是CAR-T细胞疗法,对血液恶性肿瘤有效,但在实体肿瘤治疗上存在挑战。
2. 实体肿瘤的复杂基质和免疫抑制环境限制了CAR-T细胞的作用,且可能引发严重毒性反应。
3. 开发新的CAR细胞策略是克服实体肿瘤治疗挑战的关键。
4. 巨噬细胞在肿瘤微环境中富集,提示它们可能有助于肿瘤治疗。
5. 自体巨噬细胞输注虽安全,但抗肿瘤效果有限。
6. 工程化单核细胞为CARs是一种有前景的治疗策略。
7. CAR-M细胞疗法的发展受限于单核细胞来源的稀缺。
8. THP1细胞系被用作开发新型CAR-M的细胞来源。
9. iCasp9自杀基因的应用有助于控制CAR-M细胞的增殖和安全性。
10. 新型CAR-M细胞有望结合天然免疫和适应性免疫,提高治疗效果。
细胞培养:THP-1、SKOV3和NCI-N87细胞经过短串联重复(STR)验证。所有细胞系在含有5% CO2的37°C湿润环境中培养。
iCasp9-THP1细胞构建:使用商业化的pCDH-EF1-MCS-T2A-Puro质粒,通过插入iCasp9-furin P2A-GFP或iCasp9-furin P2A-luciferase构建细胞。使用第三代慢病毒包装向量在HEK-293FT细胞中包装慢病毒,感染THP1细胞,并通过流式细胞术评估iCasp9表达效率。
HER2-CAR细胞构建:HER2-CAR主骨架遵循第一代经典结构,包含1× FLAG、抗体Fab段、CD8α铰链和跨膜区、CD3ζ细胞内段、CD147细胞内段和/或4-1 BB细胞内段。在HEK-293FT细胞中产生表达HER2-CAR的慢病毒,感染THP1细胞,并通过流式细胞术评估HER2-CAR表达效率。
细胞活力测定:细胞与不同浓度的AP1903处理,通过凋亡试剂盒染色后,使用流式细胞术评估细胞活力。
特异性吞噬测定:THP1细胞与SKOV3细胞共培养,通过流式细胞术评估THP1对SKOV3的特异性吞噬率。
乳酸脱氢酶(LDH)释放基于细胞毒性测定:THP1细胞与SKOV3细胞共培养后,收集细胞上清液,使用LDH检测试剂盒评估细胞损伤。
人MMP-13酶联免疫吸附测定(ELISA):THP1细胞培养在含有HER2蛋白的低血清培养基中,收集细胞上清液,使用MMP13-ELISA试剂盒检测MMP13分泌水平。
转录组测序:从CAR-THP1或Con-THP1细胞中提取总RNA,进行质量评估和量化,然后构建测序库并进行测序。
小鼠模型:使用免疫缺陷的BALB/c-nude小鼠和NOD.CB17-Prkdcscid Il2rgtm1/Bcgen小鼠建立小鼠模型。
多重免疫荧光染色:使用多重免疫荧光染色试剂盒对样本进行染色,通过荧光显微镜观察。
统计分析:使用GraphPad Prism 8.0或R软件进行统计分析,结果以平均值±标准偏差(SD)表示,使用双尾Student's t检验(两组,假设方差齐性)进行检验。所有图表使用GraphPad Prism 8.0和R绘制。P<0.05被认为具有统计学意义。
图1:重组HER2-CAR THP1细胞的构建和筛选
- (A)展示了CAR-THP1构建的流程图。
- (B)通过流式细胞仪检测不同CAR组合的FLAG标签表达效率。
- (C)描述了特异性吞噬作用实验的方案。
- (D,E)展示了Con-THP1和CARs-THP1对SKOV3细胞的特定吞噬作用。
- (F)通过LDH释放实验评估Con-THP1或CAR-THP1对SKOV3细胞的杀伤能力。
- (G,H)分析了Con-THP1和CAR-THP1之间的非特异性吞噬能力。
- (I–L)通过Ki-67染色和EdU掺入实验分析了Con-THP1和CAR-THP1的增殖能力。
图2:CAR-THP1在体外的功能验证
- (A,B)通过流式细胞仪检测Con-THP1和CAR-THP1对HER2蛋白的特异性结合率。
- (C)展示了CAR和FLAG-CAR蛋白质的空间结构合并图。
- (D)展示了CAR和FLAG-CAR与HER2-细胞外蛋白的分子对接结果。
- (E,F)通过分子动力学模拟展示了CAR和FLAG-CAR与HER2-细胞外蛋白的结合情况。
- (G,H)通过流式细胞仪检测CAR-HEK293FT和FLAG-CAR-HEK293FT对HER2蛋白的特异性结合率。
- (I)通过ELISAs检测MMP13的分泌水平。
- (J,K)使用Transwell板 coated with matrix 分析侵袭能力。
- (L)通过共培养跟踪SKOV3细胞生长评估抗肿瘤效率。
图3:CAR-THP1细胞在体内的抗肿瘤效果
- (A)描述了裸鼠皮下SKOV3卵巢癌异种移植模型的治疗方案。
- (B)展示SKOV3肿瘤生长曲线。
- (C–E)展示了裸鼠皮下SKOV3肿瘤组织在最后一天的照片及其重量和体积统计图表。
- (F)通过TUNEL染色评估肿瘤细胞凋亡。
- (G)通过H&E染色评估肿瘤组织结构。
- (H)通过多重免疫荧光染色评估肿瘤组织中的免疫细胞浸润情况。
- (I)描述了裸鼠皮下MDA-MB-453乳腺癌异种移植模型的治疗方案。
- (J)展示MDA-MB-453肿瘤生长曲线。
- (K–M)展示了裸鼠皮下MDA-MB-453肿瘤组织在最后一天的照片及其重量和体积统计图表。
- (N)通过TUNEL染色评估肿瘤细胞凋亡。
- (O)描述了裸鼠皮下NCI-N87胃癌异种移植模型的治疗方案。
- (P)展示NCI-N87肿瘤生长曲线。
- (Q–S)展示了裸鼠皮下NCI-N87肿瘤组织在最后一天的照片及其重量和体积统计图表。
- (T)通过TUNEL染色评估肿瘤细胞凋亡。
图4:CAR-THP1激活后的转录组变化
- (A)展示了CAR-THP1/Con-THP1比较的DEGs火山图。
- (B)展示了CAR-THP1/Con-THP1比较的DEGs热图。
- (C)展示了CAR-THP1和Con-THP1间基因表达差异的PCA图。
- (D)展示了M1和M2相关基因表达的条形图。
- (E)通过qPCR验证了Con-THP1和CAR-THP1共培养后SKOV3细胞上M1和M2标记物的表达水平。
- (F)展示了GO功能注释分析中1465个上调DEGs的BP term富集情况。
- (G–L)展示了GSEA分析结果,主要富集于巨噬细胞/单核细胞激活和产生、NK细胞、NKT细胞、Th17细胞、补体和相关细胞因子等方面。
图5:CAR-THP1与RAK免疫疗法结合具有更好的治疗效果
- (A)描述了裸鼠皮下SKOV3卵巢癌异种移植模型的治疗方案,每组6只小鼠。
- (B)展示了经过初始治疗后SKOV3肿瘤的生长曲线。
- (C–E)在治疗的最后一天,展示了裸鼠皮下SKOV3肿瘤组织的照片及其重量和体积的统计图表。
- (F)通过TUNEL染色评估SKOV3肿瘤组织的细胞凋亡情况,绿色代表TUNEL阳性的凋亡细胞。
- (G)通过免疫荧光染色检测SKOV3肿瘤组织中MMP13的表达情况,绿色代表MMP13阳性的细胞。
- (H)通过免疫荧光染色检测SKOV3肿瘤组织中RAK细胞的浸润情况,绿色代表CD8阳性T细胞。
- 比例尺=100 µm。*P <0.05, †P >0.05(不显著),‡P <0.001, §P <0.01。CAR:嵌合抗原受体;MMP:金属蛋白酶;NES:标准化富集分数;DAPI:4′,6-二氨基苯丙烷;i.v.:静脉注射;S.C.:皮下注射;TUNEL:末端脱氧核糖核苷酸转移酶dUTP切割末端标记。
1. 本研究构建了一种能特异性消除肿瘤的CAR单核细胞(CAR-THP1),增强了先天性和适应性抗肿瘤免疫反应。
2. 通过比较不同的CAR组合,选择了CD3ζ-CD147构型作为最优方案,它具有最佳的吞噬效率。
3. 利用永生化的人类单核细胞系THP1作为CAR-M的细胞来源,解决了自体单核细胞数量有限的挑战。
4. iCasp9自杀基因的引入,为控制CAR-THP1的潜在不规范增殖提供了可能。
5. CAR-THP1在体内外均表现出M1表型,能够帮助改造肿瘤微环境为促炎状态。
6. CAR-THP1能够独立于T细胞存在发挥抗肿瘤作用,适合免疫功能不全的患者。
7. CAR-THP1能够作为细胞治疗的先导,促进T细胞肿瘤内浸润,与其他免疫治疗协同作用。
8. 本研究为未来的通用CAR-M疗法开发提供了有价值的参考。
9. CAR-THP1的特异性杀伤机制、安全性和疗效还需进一步研究。
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