常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法
常见细胞污染类型如何辨别及预防解决方法:细胞培养中常见的生物污染类型有7种,分别是细菌污染,支原体污染,原虫污染,黑胶虫污染,真菌污染,病毒污染以及非细胞污染,真菌污染来源,一般是来自实验服,并且具有气候性,多雨······
发布时间:2026-06-29 09:00:00 细胞资源库平台 访问量:7
MHC-I 分子广泛表达于脊椎动物体细胞表面,通过与 NK 细胞表面的抑制性受体(如 KIR)结合传递抑制信号,维持免疫稳态。肿瘤细胞可利用这一机制,通过表达 MHC-I 分子与 KIR 结合抑制 NK 细胞活性,实现免疫逃逸。此前已有研究表明,抗 MHC-I 抗体可通过阻断抑制性受体相互作用激活 NK 细胞,但具体结合模式、结构基础及作用机制尚未明确。B1.23.2 作为一种高交叉反应性抗人 MHC-I 抗体,可识别多种 HLA-A、-B、-C 分子,但其结合表位及如何阻断 KIR 相互作用仍不清楚,这为该研究提供了核心切入点。
本研究原文标题为《Structural mechanism of anti-MHC-I antibody blocking of inhibitory NK cell receptors in tumor immunity》,发表于《Communications Biology》,该研究核心成果为解析了抗 MHC-I 抗体 B1.23.2 与 HLA-B*44:05 复合物的冷冻电镜(3.02 Å)和 X 射线晶体结构(3.20 Å),发现 B1.23.2 结合 HLA 分子的 α2₁螺旋保守区域,与 NK 细胞抑制性受体 KIR 的结合位点重叠,通过空间竞争阻断 KIR-HLA 相互作用,解除 NK 细胞抑制并激活其抗肿瘤功能,在人源化小鼠模型中显著抑制胰腺肿瘤生长。
1.重组蛋白制备与复合物组装:构建重组 B1.23.2 抗体(含 LALAPG 突变以避免 Fc 受体干扰)及 Fab 片段,通过原核表达和复性制备 HLA-B44:05/β2m / 肽段复合物,以及 19 种肽段 P8 位突变的 HLA-B44:05 变体;通过体外孵育形成 B1.23.2-HLA-B*44:05 复合物,经凝胶过滤层析纯化用于结构解析。
2.结构解析技术应用:采用冷冻电镜(cryo-EM)技术解析 B1.23.2 全长抗体及 Fab 片段与 HLA-B44:05 复合物的三维结构,分辨率分别为 3.02 Å 和 3.31 Å;通过 X 射线晶体学解析 Fab-HLA-B44:05 复合物结构(分辨率 3.20 Å),结合分子动力学模拟分析相互作用稳定性。
3.结合亲和力与特异性检测:利用表面等离子体共振(SPR)技术测定 B1.23.2 与不同 HLA 分子、肽段突变体及 HLA-A*02:01 突变体的结合亲和力(KD 值);通过流式细胞术和 Luminex 平台验证 B1.23.2 对 HLA-A、-B、-C 亚型的交叉反应性。
4.细胞功能验证:将 B1.23.2 与健康人外周血 PBMC 共培养,通过流式细胞术检测 NK 细胞的增殖标志物(Ki67)、活化信号(p-mTOR、pS6)、细胞因子(IFNγ)分泌及单核细胞 IL-15Rα 表达;采用 CFSE/7AAD 染色评估 NK 细胞对肿瘤细胞的杀伤活性。
5.动物模型验证:构建 NSG-IL15 人源化小鼠模型,皮下接种人胰腺癌细胞 KLM1,过继转移人 CD3⁻ PBMC,腹腔注射 B1.23.2 抗体,监测肿瘤生长及小鼠生存期;流式细胞术分析肿瘤浸润淋巴细胞(TILs)中 NK 细胞活化标志物(NKp46、NKG2D)表达。

图 1:B1.23.2 与 HLA-B*44:05 的结合特性与复合物结构
SPR 结果显示,B1.23.2 与 HLA-B44:05 的结合亲和力 KD=0.02 μM,显著高于 KIR 与 HLA 的结合亲和力(9.5-17 μM);B1.23.2 可识别绝大多数 HLA-A、-B、-C 亚型,但不结合 HLA-A02:01 等少数亚型。冷冻电镜分析显示,B1.23.2 Fab 片段与 HLA-B*44:05 形成稳定复合物,结构覆盖 HLA 的 α1、α2、α3 及 β2m 结构域,通过优化数据处理策略,最终获得 3.02 Å 分辨率的全长抗体复合物结构,清晰展示了 Fab 与 HLA 的相互作用界面。

图 2:B1.23.2 与 HLA-B*44:05 的相互作用细节
结构分析表明,B1.23.2 的重链(VH)和轻链(VL)CDR 环共同识别 HLA-B*44:05 的 α2₁螺旋(残基 Q141-Q155),形成 899 Ų 的埋藏表面积(BSA),无 β2m 参与相互作用。关键作用残基包括 HLA 的 K146(与 VL 的 4 个残基形成多重相互作用)、Q141、E148 等,以及 B1.23.2 VH 的 Y28、W29 和 VL 的 Y27、Y44 等酪氨酸 / 色氨酸残基,这些残基通过氢键和疏水作用稳定结合。此外,B1.23.2 的 L 链 Y32 与 HLA 结合肽的 P8 位形成氢键,揭示肽段对结合的轻微调控作用。

图 3:肽段 P8 位变体及 HLA 突变对结合的影响
HLA-B44:05 结合肽的 P8 位残基变异显著影响 B1.23.2 的结合亲和力:碱性残基(K、R、H)或苏氨酸(T)替代时结合最强(KD≈8 nM),酸性残基(E、D、C)替代时结合最弱(KD≈90 nM),分子动力学模拟显示这与 VL 的 N30 残基形成的氢键长度相关。针对 HLA-A02:01 的突变实验表明,将其 α2₁螺旋的 T142、K144、H145、H151 突变为 HLA-B44:05 的对应残基后,HLA-A02:01 获得 B1.23.2 结合能力,其中四突变体结合亲和力(KD=0.007 μM)优于野生型 HLA-B*44:05,证实 α2₁螺旋是 B1.23.2 的核心表位。

图 4:B1.23.2 与 KIR 在 HLA 上的结合位点重叠
结构叠加分析显示,B1.23.2 的 VL 结构域与 KIR2DL2 的 D2 结构域、KIR3DL1 的 D2 结构域在 HLA 表面形成空间冲突。B1.23.2 与 KIR2DL2、KIR3DL1 在 HLA 上的结合足迹高度重叠,共同识别 α2₁螺旋的 R145、K146、A149、A150、R151 残基。由于 B1.23.2 与 HLA 的结合亲和力显著高于 KIR,可通过空间竞争高效阻断 KIR-HLA 相互作用,解除 NK 细胞的抑制信号,而不影响 TCR 与 MHC-I 的结合,形成 “抗体结合→阻断 KIR→NK 细胞激活” 的分子机制。

图 5:B1.23.2 激活 NK 细胞并抑制肿瘤生长
体外实验显示,B1.23.2 处理可使 PBMC 中 CD16⁺CD56dim NK 细胞的 Ki67⁺比例从 26.7% 升至 70.9%,p-mTOR、pS6 表达及 IFNγ 分泌显著升高,单核细胞 IL-15Rα 表达上调。人源化小鼠模型中,B1.23.2 处理组的 KLM1 肿瘤体积显著小于对照组,肿瘤浸润 NK 细胞的 NKp46 和 NKG2D 表达升高,证实 B1.23.2 通过激活 NK 细胞发挥抗肿瘤作用。
本研究通过冷冻电镜、X 射线晶体学等结构生物学技术,首次解析了抗 MHC-I 抗体 B1.23.2 与 HLA-B*44:05 复合物的高分辨率结构,明确 B1.23.2 通过重链和轻链 CDR 环结合 HLA 分子的 α2₁螺旋保守区域,与 NK 细胞抑制性受体 KIR 的结合位点高度重叠,通过空间竞争和更高的结合亲和力阻断 KIR-HLA 相互作用,解除 NK 细胞的抑制信号。功能实验证实,B1.23.2 可显著促进 NK 细胞增殖、活化及细胞因子分泌,在人源化小鼠模型中有效抑制胰腺肿瘤生长。该研究不仅阐明了抗 MHC-I 抗体激活 NK 细胞的结构基础,还揭示了 “靶向 MHC-I 阻断抑制性受体” 的全新免疫治疗策略,与传统靶向 PD-1/PD-L1 的 T 细胞导向疗法形成互补,为开发 NK 细胞激活型抗体药物提供了重要理论依据和结构模板,尤其对 MHC-I 阳性肿瘤的免疫治疗具有重要应用价值。
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