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ATCC细胞培养
Calcein-AM是一种对活细胞进行荧光标记的细胞染色试剂,发绿色荧光,其激发和发射波长分别为490 nm和515 nm。因其在传统的Calcein(钙黄绿素)基础上引入乙酰甲氧基甲酯(AM)基团,增加了疏水性,使其能够轻易穿透活细胞膜。一旦进入细胞后,Calcein-AM(本身不发荧光)被细胞内的酯酶剪切形成膜非渗透性的极性分子Calcein,从而被滞留在细胞内并发出强绿色荧光。与其它同类试剂(如BCECF-AM和CFDA)相比,由于Calcein, AM细胞毒性极低,是最适合用于活细胞染色的荧光探针,而且不会抑制任何的细胞功能,如增殖和淋巴球的趋化性。由于死细胞缺乏酯酶,Calcein-AM仅用于对活细胞的细胞生存能力测试和短期标记。
PI是一种 DNA 结合性染料,其激发和发射波长分别为 535nm 和 617nm,产生红色荧光,但无膜通透性,不能透过活细胞膜,只能穿过死细胞膜的无序区域而到达细胞核,并嵌入细胞的DNA双螺旋从而产生红色荧光。因此,PI仅对死细胞染色。
由于Calcein和PI都可被490 nm激发,因此可用荧光显微镜同时观察活细胞和死细胞。而用545 nm激发,仅可观察到死细胞。
本染色方法适用于荧光显微镜、荧光酶标仪等微孔板荧光扫描设备、流式细胞仪或其他的荧光设备。本染色方法适用于大多数真核细胞,包括贴壁细胞和某些组织样本,但不包括细菌和酵母样本。
表1. 试剂盒组成信息
产品名称 | 产品规格 | 储存 | |
Calcein-AM Staining Solution(1 mM) | 100T | 100 uL | -20℃避光,12个月 |
PI Staining Solution(1.5 mM) | 100 uL | -20℃避光,12个月 | |
1× Assay Buffer | 25 mL | -20℃避光,12个月 | |
Calcein-AM Staining Solution(1 mM) | 50T | 50 uL | -20℃避光,12个月 |
PI Staining Solution(1.5 mM) | 67.5uL | -20℃避光,12个月 | |
1× Assay Buffer | 12.5 mL | -20℃避光,12个月 | |
Calcein-AM Staining Solution(1 mM) | 20T | 20 uL | -20℃避光,12个月 |
PI Staining Solution(1.5 mM) | 27 uL | -20℃避光,12个月 | |
1× Assay Buffer | 5 mL | -20℃避光,12个月 |
1. 1×染色工作液的配制:
1) 将低温保存的Calcein-AM溶液和PI溶液回到室温20-30 min。
注:第一次使用可对母液进行分装,以减少反复冻融次数。
2) 取 20 µL Calcein-AM(1 mM)溶液和27 µL PI(1.5 mM)溶液加入5 mL 1×Assay Buffer,充分混匀后,得到Calcein-AM的工作液浓度为4μM,PI的工作液浓度为8μM。即1×染色工作液。
注:由于不同类器官的最佳染色条件不同,初次实验建议做梯度实验,以确定 Calcein-AM和PI的最适浓度。梯度筛选的原则为使用最低的探针浓度得到最好的荧光结果。
2. 染色步骤:
以48孔板,每孔10 uL类器官基质胶胶滴为例,检测时只需弃除类器官培养液,保留孔板内10μL类器官基质胶凝聚物,加入染色工作液即可。
1) 吸弃类器官培养基,加入PBS清洗2-3次,以充分去除残留的酯酶酶活性。
2) 每孔加入250 μL混匀后的染色工作液,37℃孵育30~60 min。
3) 荧光显微镜下使用490±10 nm激发滤片同时检测活细胞(黄绿色荧光)以及死细胞(红色荧光)。另外,使用545 nm的发射滤片仅能观察到死细胞。也可以直接在荧光酶标仪下使用合适的滤片进行检测。
1. 由于Calcein-AM对湿度非常敏感,若是Calcein-AM溶液每次取完需要量后,必须紧紧密封盖子。建议根据单次用量,分装密封保存。
2. 由于Calcein-AM的稳定性较差,此染色工作液必须现配现用,并且在当天完。
3. 荧光染料容易淬灭,染色完成后需要尽快进行检测。使用和保存时都需要注意避光。
4. 碘化丙啶(PI)有一定的致癌性,操作时一定要注意防护。若接触到皮肤,需要立即用自来水清洗。
5. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
产品规格:1*10^6
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产品规格:1*10^6
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